Transcript Estudio de la materia Fecal

ESTUDIO DE MATERIA FECAL
Examen Coproparasitoscópico
Realiza un examen Coproparasitoscópico
(cps), a una muestra de heces con el fin de
buscar e identificar formas parasitarias.
Clasificación
que formas
parasitarias existen
los métodos de
concentración
2 tipos:
Cualitativos
el examen directo
En búsqueda de:
Clasificación
El numero que se
encuentran
Cuantitativos
Se utilizan sobre
todo en las
helmintiasis
trofozoitos,
quistes, huevecillos
y larvas.
Explicar los procedimientos de obtención y
manejo de materia fecal
Indicacion y solicitud
PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA
preparacion del paciente
obtener muestra fecal para el examen
CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALES
refrigeracion
preparacion sellada en porta -objetos
reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol)
reactivo de PVA (alcohol polivinilico)
EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO
examen macroscopico directo
(heces liquidas ,blandas o oscuras )
examen microscopico
(leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos
origen vegetal o animal ,levaduras )
Conservación y envió de las muestras
fecales
A) REFRIGERACION ;
-el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC
-Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día
-método mas sencillo y practico
B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS
-vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos
-Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la
cual se aplico bálsamo)
C )FORMOL
-aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 %
(utilidad; evita la descomposición , disminuye el olor y fija los parásitos )
D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,)
-doble utilidad (fija parásitos y los colorea)
-conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas
en un frasco y 10ml de MIF ,se mezcla con un aplicador .este puede
preservarse por un año .
E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO)
-nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL
-bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por
mucho tiempo)
EXAMEN MACROSCOPICO
1)CANTIDAD
80 a 200g
2) FORMA
puroide (cilindrica )
escíbalos(aglomeraciones esfericas)
deposición caprina (pequeñas y numerosas)
laminada o de cinta
3)CONSISTENCIA
duras
pastosas
fluidas
intermedias
4)VISCOSIDAD
viscosas (pastosas)
poco viscosas
grasas
5)OLOR
inodoro
(meconio)
aumentado
debil
(comidas ricas en carne y pescado)
(dieta vegetariana y lactea)
ligeramente agria
(niño en pecho)
putrido
(olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASES
agrio penetrante rancio (heces acidas y gases)
(descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto)
Nauseabundo
6) RESTOS ALIMENTICIOS
restos vegetales
proteicos
grasas
7) REACCION
acida
alcalina
8 )COLOR
marron (NORMAL)
verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos)
rojo ( hemorragias proximal al ano)
negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon ,hierro , bismuto)
blanco (acolia o hipocolia,seudocolia)
amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )
(dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal)
(insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica)
EXAMEN MICROSCOPICO
SHIGELOSIS
1:LEUCOCITOS
POLIMORFONUCLEARES
SALMONELOSIS
FIEBRE TIFOIDEA
ESCHERICHIA COLI
MONONUACLERES
FIEBRE TIFOIDEA
2.-ERITROCITOS
HEMORRAGIA DE COLON
HEMORROIDES
SINDROME DISENTERICO
3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN
10 A 30 MICRAS
DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS
ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS
4.-RESTOS DE ALIMENTOS
ALMIDONES
CELULAS Y FIBRAS VEGETALES
5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMAL
GRASAS
FIBRAS MUSCULARES
6.-FLORA BACTERIANA
BACILOS CORTOS
7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOS
GRANULOS DE ALMIDON
GOTAS DE ACEITE
CELULAS ANIMALES
CELULAS VEGETALES
POLEN
LEVADURAS
Métodos de
concentración
Técnica de Ritchie o
centrifugación con formol - éter
 Concentra quistes de
protozoos, huevos y
larvas de helmintos
 Ventajas del uso de eter
y formol
Técnica de Faust o de flotación
con sulfato de zinc
 Utiliza medio liquido mas
pesado que los parásitos
 Concentra quistes, huevos
y larvas
 Desventaja: poco eficaz
para Taenia spp., F.
hepatica y óvulos de A.
lumricoides
Técnica de flotación
por Sheather
• Separa, concentra y
recobra ooquistes de
Isospora,
Cryptosporidium y
Cyclospora.
• Solución densa de
azúcar
Técnica de Willis Molloy
 NaCl
 Para huevos de
uncinaria e
Hymenolepsis
Equipo 3
COPROPARACITOCOPICO
Métodos de
concentración
Técnica de Ritchie o
centrifugación con formol - éter
• Concentra quistes de
protozoos, huevos y
larvas de helmintos
• Ventajas del uso de eter
y formol
Técnica de Faust o de flotación
con sulfato de zinc
• Utiliza medio liquido mas
pesado que los parásitos
• Concentra quistes, huevos y
larvas
• Desventaja: poco eficaz
para Taenia spp., F.
hepatica y óvulos de A.
lumricoides
Técnica de flotación
por Sheather
• Separa, concentra y
recobra ooquistes de
Isospora,
Cryptosporidium y
Cyclospora.
• Solución densa de
azúcar
Técnica de Willis Molloy
• NaCl
• Para huevos de
uncinaria e
Hymenolepsis
COPROPARASITOSCÓPICO
Garduño Pérez Isaí Salomón
CONSIDERACIONES IMPORTANTES
•Técnica especifica para cada parásito. Importante
proporcionar información acerca del paciente (origen
geográfico, signos clínicos esenciales, resultados de
otros exámenes y tratamientos recientes).
•Toma de muestra ideal en laboratorio (protozoarios).
•Realización sistemática de 3 exámenes de días no
consecutivos.
EXAMEN PARASITOLÓGICO
Anillos de taenias (solium y saginata)
Prurito anal y
discreta
eosinofilia
Anquilostosis
(Reacción alergíca con exantema,
neumonitis, síntomas gastrointestinales,
anemia hipocroma microcítica)
método del papel de filtro en tubo
o de harada-mori
Larvas de nemátodos y
para embrionar huevos
de tremátodos y
céstodos
1. Homogeneizar las
heces
fecales
por
tamizaje (colador de
malla fina).
2. Efectuar siembra de
heces sobre la tira de
papel filtro 10 cm (2 cm
libres).
3. Introducir la tira
dentro
del
tubo,
extremo
libre
sumergido en unos 5 ml
de agua.
4. Tapar tubos, colocarlos
verticalmente en gradilla e
incubar a 20º C.
método de agar para strongyloides
Strongyloides, Necator americanus y
Ancylostoma duodenale
1. Preparar medio, 1.5% agar, 0.5%
extracto de carne, 1.0´% peptona
y 0.5% NaCl. Autoclave y pasar
más de 9 ml del medio a cajas de
Petri estériles
2. Dejar secar el medio
a temperatura ambiente
por 4-5 días.
3. Colocar 2 g de materia
fecal en el centro, sellar
cajas y dejarlas a
temperatura ambiente
por 2 días.
4. Observar a simple vista
y
microscopio
estereoscópico con filtro
verde.
Auxiliares de diagnóstico en el paciente
gastroenterológico.
COPROGRAMA
COPROGRAMA
•
Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico:
–
pH. Normal 7.0
•
Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido.
•
Diarrea de origen toxico: neutro
•
Diarreas virales: acido
•
Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido
– La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales.
–
Azucares reductores. Glucosa, lactosa.
•
Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest.
•
Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-)
•
Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+)
•
Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas
–
Sangre oculta
–
Prueba para hemoglobina humana
METODO DE RECUENTO DE HUEVOS
• Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección
por ciertos helmintos.
– Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis.
• Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de
materias fecales (h.p.g.)
• Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis
mencionadas.
• Recuento en placa microscópica
• Técnica de Kato Katz
• Técnica de Stoll- Hausheer
Strongyloides
TECNICA DE CARBON O ARENA
Noemí
PASOS
• Mezclar materia fecal con el
cultivo
– Se agrega agua.
– Temperatura: Ambiente
– Días: 5-7
• A los 3 días se pueden encontrar
larvas filariformes de
Strongyloides.
• 6 días: uncinarias
COLORACIÓN.
• Protozoos Intestinales:
– Con estos se obtienen
detalles morfológicos
mas exactos.
– Para la docencia
– Para archivo
– Remitir para
confirmación de Dx.
TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN
Protozoos intestinales (amibas)
• Morfología nuclear
• REACCIVOS:
–
–
–
–
Fijador de Scchaudinn
Alcohol iodado
Mordiente
FeNH4(SO4)2-12H2O
TECNICA DE COLORACION TRICOMICA.
Coloración de los protozoos
• REACTIVOS:
– Fijador:
Citoplasma: Azul verdoso
Cuerpos cromatoidales, los
eritrocitos y las bacterias:
rojo o purpura
Fondo: verde.
Huevos y larvas: rojo
• Schaudinn oPVA
– Colorantes tricomico:
1. Cromotropi 2 R
2. Verde claro 2R
3. Verde brillante FCF
4. Acido fosfotungstico
5. Acido acético glacial
6. Agua destilada
7. Acido acético
COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA
Para
• cryptosporidium
• Cyclospora
• Isospora
• Ooquistes: rojo brillante.
• Fondo: verde.
• Son redondeados y
ovalados de 3 -5 micras de
diámetro , en algunos se
logra ver los corpúsculos
internos teñidos mas
oscuros que corresponden a
los esporozoitos.
COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA
MICROSPORIDIOS
REACTIVOS :
• Weber
• Material fecal y aspirado
duodenal
• Colorante de comotropo
1. Cromotropo 2R
2. Fast green
3. Acido fosfotungstico
4. Acido acético
5. Alcohol acido