دکتر آتوسا شریعت تربقانی آزمایشگاه مرجع سالمت   Electrical Optical Outlet Light Source Beam Aperture Photodiode Inlet Constant Current Source Electrodes Aperture Vacuum Pump 9% NaCl Electrolyte Tube with Aperture Cell Container Direction of Flow.

Download Report

Transcript دکتر آتوسا شریعت تربقانی آزمایشگاه مرجع سالمت   Electrical Optical Outlet Light Source Beam Aperture Photodiode Inlet Constant Current Source Electrodes Aperture Vacuum Pump 9% NaCl Electrolyte Tube with Aperture Cell Container Direction of Flow.

Slide 1

‫دکتر آتوسا شریعت تربقانی‬
‫آزمایشگاه مرجع سالمت‬


Slide 2




Electrical
Optical


Slide 3

Outlet

Light Source
Beam

Aperture
Photodiode

Inlet


Slide 4

Constant Current

Source

Electrodes

Aperture

Vacuum
Pump

9% NaCl
Electrolyte

Tube with
Aperture

Cell
Container

Direction of
Flow


Slide 5

Coincidence
Carry over
Post aperture recirculation






Slide 6


Slide 7

1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.

Inadequate mixing
Pipetting fault
Inappropriate dilution
Delay in transferring suspension to counting chamber
Electric interference
External noise
Aperture blockage
Aspiration failure
Contaminated diluent
Air bobbles
Residual lysic agent
Inadequate drainage


Slide 8

RBC/ WBC imprecision
linearity
WBC
Platelet

CV%
Calibration
incomplete
lysis stability

solution with dust
imprecision


Slide 9

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫مطالعه کاتالوگ‬
‫‪ 5‬روز آشنائی با نگهداری و کاربری و ‪ SET UP‬دستگاه‬
‫استفاده از خون کنترل و رسم چارت‬
‫کالیبراسیون دستگاه‬


Slide 10

‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫شرایط خونگیری‬
‫غلظت ضد انعقاد‬
‫ظرف مناسب‬
‫درپوش مناسب‬
‫شستشوی ظروف‬
‫زمان آزمایش ‪ 4-1‬ساعت‬
‫مخلوط شدن با ضد انعقاد‬


Slide 11

‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫نوسانات برق‬
‫اتصال به زمین‬
‫محلولها‬
‫دفع‬
‫زمینه‬


Slide 12






RBC < 0.03 × 10 12/l
WBC < 0.04 × 10 9/l
HGB < 0.2 g/l
PLT < 5 ×10 9/l


Slide 13

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫نمونه حد اقل ‪ 3-5‬دقیقه روی روتاتور و یا ‪ 20‬بار با دست سر‬
‫و ته شود‬
‫حباب نداشته باشد‬
‫لخته نداشته باشد‬


Slide 14






Each step in triplicate (each dilution read in
duplicate)
10-20 normal individuals
Hct can be corrected 1.5-3%




2% for 0.440.442%=0.0088 .44-.0088=0.43

CF(coefficient factor)=
[(manual-analyzer) / (analyzer )]100


Slide 15

Sample

1
2
3
4
5

manual

11,11.5,11
12,12.8,13
14,14.2,13.9
13,13.5,13.6
14.3,14.6,14.5

mean

cell counter

11.7 12,12,12
12.6
13,12.8,12.8
14.03 14.5,14.5,14.8
13.37 13.6,13.1,13.4
14.47 15,15,15.1

Mean(manual)=11.7+12.6+14.03+13.37+14.47 = 13.23
5
Mean(cell counter)=12+12.87+14.6+13.37+15.13=13.57
5
CF=(13.23 – 13.57 ) / 13.57 = -0.025
98 X (-0.025) = -2.45 → 98 – 2.45 = 95.55

mean

12
12.87
14.6
13.37
15.03


Slide 16

Concentration 1.5 mg / cc

or

3 mg / 2 cc

Solution 3%
3 gr / 100 cc or 3000 mg /1000
30000 mg
1000 cc
3 mg
X
X= 0.1 cc or 100 µl
Solution 6%
6 gr / 100 cc or 6000 mg /1000
60000 mg
1000 cc
3 mg
X
X= 0.05 cc or 50 µl


Slide 17

‫‪.A‬‬

‫‪.B‬‬
‫‪.C‬‬
‫‪.D‬‬
‫‪.E‬‬
‫‪.F‬‬
‫‪.G‬‬
‫‪.H‬‬
‫‪.I‬‬
‫‪.J‬‬
‫‪.K‬‬

‫نمونه سالم‬
‫نمونه لیپمی‬
‫پلی سیتمی ( هموگلوبین ‪ 18-20‬میلیگرم در دسی لیتر )‬
‫آنمی میکروسیتیک )‪(MCV <75 fl , Hg=10-11 gr/dl‬‬
‫لکوسیتوز )‪(WBC=20-40×10 9 /l‬‬
‫لکوپنی ) ‪(WBC = 0.5-2 × 10 9 /l‬‬
‫ترومبوسیتوز )‪(PLt = 500-700 × 10 9 /l‬‬
‫ترومبوپنی )‪(PLt = 50-80 × 10 9 /l‬‬
‫آنمی ماکروسیتیک )‪(MCV>100 , Hg = 10-11 gr/dl‬‬
‫جاندیس ) ‪(Bil > 30 µmol/l‬‬
‫پاراپروتئینمی‬


Slide 18

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫خون کنترل‬
‫بررسی منحنی کنترل –هر ‪ 5‬روز‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نمونه های خارج از ‪ +4Sd‬را مردود کرده‬
‫هر ‪ 5‬روز دوباره میانگین انحراف معیار محاسبه شود‬

‫در این مدت از محلولهایی بایک سری ساخت استفاده شود‬


Slide 19

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪ 20‬روز کاری‬
‫هر روز دو نمونه که هر کدام را به صورت دوپلیکیت به دستگاه‬
‫دهید‬
‫‪‬‬

‫اگر قدر مطلق تفاوت دو خوانده از ‪ 5/5‬انحراف معیار بیشتر بود باید آن‬
‫دو خوانده را حذف کرد‪.‬‬


Slide 20


Slide 21


Slide 22


Slide 23

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪ 10‬نمونه خون تازه با دامنه های متفاوت که جهت انجام آزمایش‬
‫‪ CBC‬جمع آوری شده را در شرایط یکسان هر کدام را ‪ 10‬بار‬
‫آزمایش کرده سپس نمونه ها را در یخچال بگذارید‪.‬به مدت ‪ 5‬روز‬
‫نمونه ها را در پایان همانروز پس از آن که به دمای اطاق رسید‬
‫دوباره مانند ران اول آزمایش کنید‪ .‬در این صورت می توان‬
‫برای هر روز به طور جداگانه ‪SD‬و‪ CV‬محاسبه کرده که به‬
‫عنوان ‪ Within-run Precision‬خواهد بود‪ .‬نتایج آزمایشهائی‬
‫که در یک روز و طی ‪ 2‬ران کاری آزمایش شده به عنوان‬
‫‪Between-run Precision‬خواهد بود‪.‬‬
‫برای بررسی ‪ Precision Between-day‬از خون کنترل‬
‫استفاده شود نتایج آزمایشهای ده روز متوالی محاسبه شود‪.‬‬


Slide 24

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪ 20‬روز هر روز یک نمونه کنترل را ‪ 20‬آزمایش‬
‫با کمک فرمولهای رایج ‪ ،‬عدم کنیددقت را محاسبه نمائید‬


Slide 25

test

unit

Level
1

Level Level Level Level
2
3
4
5

Hematocrit

L/L

0.14

0.33

0.56 0.70

Hemoglobin

g/dl

4.5

10.5

17

23

Mean corpuscular volume

Fl

80

100

White blood cell count

K/µl

0.5

3

12

30

Platelet count

K/µl

10

50

100

600

1000


Slide 26

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪ CV‬قابل قبول برای ‪ within-run‬یا ‪ within-day‬برابر‬
‫( ‪ ) 0.25 ×TE‬می باشد‬

‫‪ CV‬قابل قبول برای ‪ between-day‬برابر‬
‫‪ )TE) 0.33 ×T‬می باشد‬


Slide 27

Test

White cell count

Allowable total
error (TE )
Target + 15%

Within-run CV
Within-day CV
3.75%

Erythrocyte count Target + 6%

1.5%

Hematocrit

Target + 6%

1.5%

Hemoglobin

Target + 7%

1.75%

Platelet count

Target + 25%

6.25%


Slide 28

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪ ،‬یک نمونه ‪ high‬را سه بار پشت سر هم آزمایش کرده‬
‫)‪(H1,H2,H3‬‬
‫سپس یک نمونه ‪ low‬را سه بار آزمایش کنید ‪(L1.L2.L) .‬‬
‫نمونه های ‪C / D‬‬
‫نمونه های ‪E / F‬‬
‫نمونه های ‪G / H‬‬
‫سپس برای هر یک از پارامترها‪ ،‬با کمک فرمول زیر محاسبه‬
‫نمائید‪.‬‬
‫= ‪%carry over‬‬


Slide 29

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫برای مثال اگر برای شمارش گلبول قرمز سه بار نمونه باالو‬
‫سپس سه بار نمونه پائین به شرح زیر باشد‪:‬‬
‫‪6.28-6.27-6.30 0.74-0.52-0.49‬‬
‫به روش زیر محاسبه خواهد شد‬

‫نتایج را با ادعای سازنده مقایسه نمائید‪.‬‬


Slide 30

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫بدین منظور نمونه های الزم را به طور سریال رقیق کرده به طوری که‬
‫در محدوده ‪ reportable range‬دستگاه باشد ‪ .‬سپس مقادیر فوق را‬
‫با مقادیری که از طریق محاسبات آماری بدست آمده مقایسه نمائید‪.‬‬
‫برای این مرحله نمونه های ‪ C‬و ‪ E‬و ‪ G‬مورد نیاز می باشد‪.‬‬
‫جهت پالکت از نمونه فردی که با ‪ platelet rich plasma‬مخلوط‬
‫شده استفاده نمائید‪.‬‬
‫برای لکوسیت میتوان از نمونه بیمار مبتال به ‪ CML‬استفاده کرد‪.‬‬
‫برای هموگلوبین و گلبول قرمز پارامترهای ‪MCV.MCH.MCHC‬‬
‫محاسبه شود‪.‬‬
‫جهت رقیق کردن از پالسمای فرد استفاده شود‬


Slide 31

‫‪‬‬

‫برای هر یک از پارامترها ‪،‬حد اقل پنج رقت تهیه گردد و هر نمونه را دو تا‬
‫سه بار آزمایش کرده ‪ ،‬میانگین را به کار برید‪.‬‬
‫‪High pool‬‬

‫‪Low pool‬‬

‫‪0%‬‬

‫‪0‬‬

‫‪5 part‬‬

‫‪Mixture 1‬‬

‫‪25%‬‬

‫‪1 part‬‬

‫‪3 part‬‬

‫‪Mixture2‬‬

‫‪50%‬‬

‫‪2 part‬‬

‫‪2 part‬‬

‫‪Mixture3‬‬

‫‪75%‬‬

‫‪3 part‬‬

‫‪1 part‬‬

‫‪Mixture4‬‬


Slide 32

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫برای هر رقت‪ ،‬دو نتیجه ثبت نمائید یکی نتیجه آزمایش با دستگاه و‬
‫یکی نتیجه ریاضی محاسبه شده‬
‫منحنی رگرسیون خطی دو سری اعداد ( سری اول مقادیر آزمایش‬
‫شده و سری دوم مقادیر محاسبه شده است) را بدست آورید‪.‬‬
‫همبستگی این دو باید به صورت ‪ R2 > 0.95‬باشد‪.‬‬


Slide 33

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫حداقل نمونه خون ‪ 100‬فرد که شامل افراد سالم و بیمارباشد ‪ ،‬با دستگاه‬
‫فوق و سیستم قابل قبول مورد آزمایش قرار میگیرد‪.‬‬
‫بهتر است هر نمونه را به صورت دوپلیکیت آزمایش کرد تا از خطای‬
‫راندوم جلوگیری شود‬
‫بهتر است نمونه ها طی روزهای مختلف ( ‪ 20‬روز ) آزمایش شود‬
‫بهتر است نمونه ها را در فاصله زمانی کوتاه ( ترجیحا ً بالفاصله )‬
‫توسط دو دستگاه آزمایش کرد تا پارامترهای خونی در اثر گذشت زمان‬
‫تغییر نکنند‬
‫تبصره ‪ :‬الزم به ذکر است که باید تمام نکات الزم برای تهیه ی نمونه‬
‫خون ‪، CBC‬مانند ضد انعقاد مناسب ‪ ،‬زمان انجام آزمایش ‪ ،‬مخلوط‬
‫کردن و ‪ .....‬مد نظر گرفته شود ‪.‬‬


Slide 34

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫طبق پیشنهاد ‪ FDA‬دستگاه سل کانتر با روش مرجع ‪،‬مورد‬
‫مقایسه قراربگیرد به همین دلیل برای پارامتر های هموگلوبین و‬
‫هماتوکریت و همچنین شمارش افتراقی گلبولهای سفید‪ ،‬از روش‬
‫دستی با کارشناسان کارآزموده و تهیه حداقل دو گسترش برای هر‬
‫نمونه ‪،‬استفاده می گردد‪.‬‬
‫تبصره‪ :‬روش انجام آزمایش های فوق طبق دستورالعمل های‬
‫‪ CLSI‬باشد‬


Slide 35

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫پس از انجام آزمایشها ‪ ،‬نتایج را با محاسبه ‪ R2‬و – ‪Slop‬‬
‫‪ intercept-Bias‬مورد مقایسه قرار میدهیم‪ .‬اگر چه برای تفسیر‬
‫نتایج از محاسبه ‪ T duplicate test‬هم استفاده می کنیم ‪.‬‬
‫برای ‪ flag NRBC & flag immature cell‬با توجه به‬
‫گسترشهای تهیه شده‪ ،‬حساسیت و اختصاصیت را محاسبه می کنیم‬


Slide 36

‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫این ارزیابی در مورد دستگاههائی صورت میگیرد که سیستم مخلوط‬
‫کردن اتوماتیک نمونه را دارند‪.‬‬
‫برای این کار شمارش گلبولهای قرمز را مالک قرار دهید‪.‬‬
‫‪ 14‬نمونه را ‪ 10‬بار سروته کرده و هرکدام را ‪ 3‬بار آزمایش کرده ‪،‬‬
‫میانگین را برای هر نمونه به عنوان مقدار پایه ‪ baseline‬در نظر‬
‫گرفته میشود‪.‬‬
‫نمونه هارا ‪ 4‬ساعت در دمای اطاق قرار داده‬
‫بدون آنکه نمونه هارا تکان دهید با سیستم اتوماتیک مورد آزمایش قرار‬
‫دهید‪.‬‬
‫نمونه ها را با دست سروته کرده و دوباره با سیستم اتوماتیک دستگاه‬
‫آزمایش کنید‪.‬‬


Slide 37

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫نتایج را در دو مرحله سوم و چهارم با مقادیر پایه ( مرحله اول )‬
‫مقایسه کنید‪ .‬اختالف تا ‪ baseline 1.5%‬قابل قبول میباشد‪.‬‬
‫به عنوان مثال نمونه اول سه بار‪ ،‬آزمایش و نتایج در جدول ثبت‬
‫شده است‪.‬‬
‫‪RBC1‬‬
‫‪4.1‬‬
‫‪4.12‬‬
‫‪4.11‬‬
‫‪4.11‬‬
‫‪4.09‬‬
‫‪4.13‬‬
‫‪0.49‬‬
‫‪-0.49‬‬
‫‪ok‬‬

‫‪Run1‬‬
‫‪Run2‬‬
‫‪Run3‬‬
‫‪Average‬‬
‫‪4h Unmixed‬‬
‫‪4h Premixed‬‬
‫‪Change unmixed%‬‬
‫‪Change premixed %‬‬
‫‪<1.5%‬‬


Slide 38

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪ 4.1+4.12+4.11 / 3 = 4.11‬میانگین محاسبه شده‬
‫مطابق مرحله سوم ‪،‬بدون مخلوط کردن آزمایش شده و ‪4.09‬‬
‫بدست آمده است‪.‬‬
‫مطابق مرحله چهارم پس ازمخلوط کردن با دست ‪ ،‬آزمایش انجام‬
‫شده ‪4.13‬‬


Slide 39

‫‪‬‬

‫در صورت امکان ‪ ،‬از این دستگاه در برنامه ارزیابی خارجی‬
‫کیفیت استفاده شود و در مقایسه با سایر سیستمهای موجود قرار‬
‫بگیرد‪.‬‬


Slide 40

‫در حین کار باید به نحوه کار با نرم افزار دستگاه توانائی های آن و‬
.‫ بودن آن نیز توجه کرد‬user friendly
GP19-A Laboratory Instruments and Data 
Management Systems: Design of Software
User Interfaces and End-User Software Systems
Validation, Operation, and Monitoring;
Approved Guideline


Slide 41

General Principles of Software Validation; Final
Guidance for Industry and FDA Staff
Document issued on: January 11, 2002
U.S. Department Of Health and Human Services
Food and Drug Administration
Center for Devices and Radiological Health
Center for Biologics Evaluation and Research
GP19-A Laboratory Instruments and Data Management
Systems: Design of Software User Interfaces and EndUser Software Systems Validation, Operation, and
Monitoring; Approved Guideline , CSLI


Slide 42

Homogenous

Non-homogenous




Slide 43

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫‪‬‬

‫بعد از اینكه نمونه ها بسته بندي و آماده ارسال شد باید این كار‬
‫انجام شود‪.‬‬
‫تعداد مناسبي از نمونه ها( ‪ )%5‬به صورت تصادفي انتخاب شود‬
‫به طوریكه از تمام جعبه ها باشد‪.‬‬
‫هر نمونه دو بار به سل كانتر داده شود‪.‬‬


Slide 44

‫‪X‬‬
‫‪X1‬‬
‫‪X2‬‬
‫‪X3‬‬
‫‪….‬‬

‫بار دوم‬
‫‪X1.2‬‬
‫‪X2.2‬‬
‫‪X3.2‬‬
‫‪…..‬‬

‫بار اول‬
‫‪X1.1‬‬
‫‪X2.1‬‬
‫‪X3.1‬‬
‫……‬


Slide 45

‫بار اول‬

‫بار دوم‬

Wt

Wt2

X1.1

X1.2

X1.1-X1.2

(X1.1-X1.2)2

X2.1

X2.2

X2.1-X2.2

(X2.1-X2.2)2

X3.1

X3.2

X3.1-X3.2

(X3.1-X3.2)2

…….

……..

……….

……….



Duplicate test


Slide 46

Ss  0.3 sd test for program


Slide 47

Stable

Unstable


Slide 48

‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬
‫‪‬‬

‫تعدادي از نمونه ها را انتخاب كرده ( حد اقل سه نمونه )‬
‫تا زماني كه آخرین جواب آزمایشگاهها دریافت و ران كاري بسته‬
‫شد نگه داشته شود(در شرایط مناسب)‬
‫سپس هر نمونه را دو بار آزمایش كرده‬
‫میانگین نتایج را محاسبه كرده‬
‫میانگین حاصله را با میانگین هموژنیتي مقایسه كنید‬


Slide 49

Test or Analyte

Acceptable Performance

White cell differentiation

Target ± 3 SD based on percentage of
different types of white cells

Erythrocyte count

Target ± 6%

Hematocrit

Target ± 6%

Hemoglobin

Target ± 7%

Leukocyte count

Target ± 15%

Platelet count

Target ± 25%


Slide 50

‫‪.I‬‬
‫‪.II‬‬

‫با درب بسته‬
‫پس از باز شدن درب‬

‫چند ویال را به طور تصادفي انتخاب كرده‬
‫چند ویال را با درب باز و چند عدد را با درب بسته در دماي اطاق نگه‬
‫میداریم‪.‬‬
‫هر ساعت و یا هر نیم ساعت آزمایش مي كنیم (بخصوص با درب بسته‬
‫بسیار اهمیت دارد زیرا تخمیني از شرایط توزیع بدون زنجیره‬
‫سرد داریم)‬


Slide 51

‫با تشکر‬