Transcript Análisis de toxicidad en el agua
SERIE AUTODIDÁCTICA DE MEDICIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA, SEGUNDA PARTE.
ANÁLISIS DE TOXICIDAD EN EL AGUA Autora: Yolanda Pica Granados.
Revisora IMTA: Alicia Lerdo de Tejada Brito Revisores CNA: Irma Laura Medina Salazar Luis Miguel Rivera Chávez Editor: César G. Calderón Mólgora Presentación: Silvia Mendoza Vergara SUBDIRECCIÓN GENERAL DE ADMINISTRACIÓN DEL AGUA (CNA) COORDINACIÓN DE TRATAMIENTO Y CALIDAD DEL AGUA (IMTA)
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¿ Para quién?
Esta publicación tiene por objeto proporcionar a los especialistas técnicos que constituyen las brigadas de muestreo, inspección y verificación de descargas, la información básica sobre el uso de pruebas toxicidad para el control de agentes tóxicos en efluentes líquidos.
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¿ Para qué?
A través de este manual el usuario será orientado en los aspectos técnicos y científicos vinculados al desarrollo de pruebas de toxicidad e iniciado en el conocimiento de los métodos disponibles adoptados por la normatividad nacional, y sus formas de aplicación. También será introducido en las formas de manejo de la información que surge del empleo de las pruebas de toxicidad, en las estrategias de seguimiento para la inspección de calidad de resultados y criterios de clasificación y elementos interpretativos.
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CONTENIDO
1 Importancia del control de los agentes tóxicos
2 Tentativas de control de agentes tóxicos
3
3.1 Efecto Agudo 3.2 Efecto crónico
4
5
6
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La contaminación ambiental por agentes químicos ha adquirido proporciones relevantes en los últimos 50 años.
muy Se estima que más de nueve millones de sustancias son liberadas al ambiente en forma cotidiana; por diversas rutas, las sustancias se incorporan a los ecosistemas acuáticos.
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La presencia de contaminantes es siempre un riesgo potencial para la salud de los seres vivos.
Dicho riesgo se evalúa a través de la probabilidad de daños que pueda causar en el ambiente.
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Un ambiente seguro es aquel en el que la presencia de un agente químico en una concentración determinada representa un nivel de riesgo aceptable.
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Ejemplo
símil con un medicamento
Las medicinas son consideradas seguras si al administrar las dosis necesarias para controlar una enfermedad, los efectos colaterales son aceptables.
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Para evaluar el riesgo que una sustancia contaminante impone al medio ambiente, no basta con conocer su concentración, sino que se
debe considerar los efectos que la sustancia es capaz de producir . La estimación de dichos
efectos es la evaluación de su toxicidad.
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Toxicidad Propiedad inherente a un agente químico de producir efectos adversos en los organismos expuestos, por lo que el empleo de organismos y la medición de los efectos producidos en ellos (respuesta biológica) es la única forma de evaluarla.
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Respuesta biológica No sólo es el resultado de la concentración de una sustancia específica en la muestra, también involucra los siguientes factores:
• • •
Interacción de un contaminante con otras sustancias presentes.
La acción de procesos físicos, químicos y biológicos que persisten en el ambiente.
La disponibilidad del contaminante, que a su vez depende de muchas otras variables.
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El término toxicidad se utiliza con frecuencia para definir a la evaluación o determinación analítica de contaminantes tóxicos, como es el caso de las pruebas CRETIB Inflamable, (Corrosivo, Reactivo, Explosivo, Tóxico, Biológico infeccioso). Sin embargo, estas pruebas no evalúan los efectos de las sustancias sobre los organismo. Por ello la analogía es inapropiada.
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2. Tentativas de control de agentes tóxicos ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
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Las pruebas de toxicidad son la única herramienta analítica que permite complementar la
y información que surge de los procedimientos químicos tradicionalmente utilizados para el control de la calidad y de contaminación del agua.
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La reglamentación en materia de control de la calidad del agua en México se encuentra en uso desde la década de 1970 y está basada en la evaluación y control de sustancias químicas específicas.
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En algunos países industrializados, se ha promovido el uso pruebas de toxicidad como herramientas de utilidad (complementarias a las determinaciones analíticas) para el control de la calidad del agua.
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El uso de estas herramientas biológicas contribuye a lograr un mejor entendimiento del riesgo en que se encuentra un cuerpo receptor al verse sometido a numerosas descargas puntuales.
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A través de la evaluación de los efectos producidos por cada descarga y de los efectos generados por la mezcla de todas las descargas en el cuerpo receptor, puede estimarse si la adición de las distintas descargas se traduce en efectos: a) Antagónicos.
b) Aditivos.
c) Sinérgicos.
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Efecto antagónico Cuando una composición actúa sobre la otra reduciendo la incidencia potencial tóxico de una mezcla.
de efectos o ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
A Efecto antagónico. A + B = 0 ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
B
Efecto aditivo Cuando las cargas contaminantes se suman y en consecuencia los efectos también.
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A ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA Efecto aditivo. A + B = 1 + 1 = 2
B
Efecto sinérgico Cuando los componentes reaccionan entre si incrementando su potencial tóxico y promoviendo en las mezclas efectos muy superiores.
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A ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA Efecto sinérgico. A + B =
a
B
Tanto el control mediante análisis químicos de sustancias específicas, como el control a través de pruebas de toxicidad presentan limitaciones.
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Limitaciones del control por análisis químicos
•
Se tendrían que evaluar la totalidad de sustancias químicas que constituyen las descargas:
–
No es factible técnica ni económicamente.
–
No es posible determinar la biodisponibilidad de los agentes tóxicos.
–
No es posible determinar la interacción entre los diversos contaminantes.
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Limitaciones del control por pruebas de toxicidad
•
La toxicidad de una muestra es evaluada en su conjunto.
•
No es posible identificar los compuestos específicos que causan los efectos deletéreos.
•
No es posible determinar las propiedades específicas de los agentes químicos.
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Ventajas del control por pruebas de toxicidad
•
Permite evaluar la biodisponibilidad de los agentes tóxicos.
•
Permiten evidenciar los fenómenos de aditividad, antagonismo o sinergia entre los agentes tóxicos.
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La riqueza de conjuntar las herramientas químicas y biológicas:
•
Se logra una identificación plena de la toxicidad (aguda o crónica) de los efluentes y del cuerpo receptor y de los agentes causales.
•
Permite plantear estrategias integrales de control de la calidad del agua en cada cuerpo receptor.
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3. Pruebas de toxicidad ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
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Pruebas de toxicidad o Ensayos biológicos Son empleados para evaluar efectos que un contaminante o mezcla de ellos es capaz de causar en organismos de prueba expuestos a una serie de diluciones de la muestra de prueba.
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Efectos normalmente utilizados Son aquellos que inciden de manera relevante en el desempeño de las comunidades acuáticas:
•
La muerte.
•
La reproducción.
•
El crecimiento.
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Evaluación de la muestra Se recomienda el uso de por lo menos tres organismos de prueba diferentes y de distintos niveles tróficos.
• Productores primarios • Consumidores primarios • Consumidores secundarios • Detritivoros
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Productor primario Consumidor primario
Ejemplo
Consumidor secundario
Selenastrum capricornutum Daphnia magna
Descomponedor Organismos seleccionados ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Poecilia reticulata
Vibrio fischeri
La importancia del empleo de por lo menos tres distintas especies de prueba para una misma evaluación, radica en la diferencia de sensibilidad que puede presentarse entre los distintos organismos.
Dependiendo de la composición química de un efluente este puede ser no tóxico para alguna de las especies, mientras que para las otras los efectos pueden ser considerables.
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Las algas, por ejemplo, son muy sensibles a una amplia gama de tóxicos, sin embargo, son resistentes al DDT.
Por ello es importante contar con más de un organismo de prueba.
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De los resultados obtenidos debe elegirse el del organismo que haya resultado más sensible, y con esa información estimar, con mayor certidumbre, el efecto deletéreo o el impacto de un efluente en el cuerpo receptor.
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En México, los
con Daphnia magna y Vibrio fischeri han sido publicados por la entonces SECOFI y forman parte de los métodos normalizados para la evaluación de la toxicidad en el agua.
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Agudo Efectos Crónico
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Efecto agudo Respuesta severa o rápida de organismos acuáticos a un estímulo.
Periodo: generalmente es menor a las 96 h.
Manifestaciones del efecto: mortalidad, inmovilidad o
.
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Para evaluar el efecto agudo se utiliza el término .
Concentración Letal Media (CL 50 ) o Concentración Efectiva Media (CE 50 ).
Indican la concentración de la muestra en que se produce la mortandad del 50 % de la población de organismos expuestos.
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Efecto crónico Es la respuesta a un estímulo que persiste por largo tiempo. Es observado a través de pruebas cuya duración abarca el ciclo de vida de los organismos de prueba.
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Efecto crónico Es el resultado de alteraciones subletales.
Se presenta cuando las concentraciones de un agente tóxico o mezcla de estos permite la supervivencia de organismos, pero afectan una o varias de sus funciones biológicas.
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Efecto crónico Algunas funciones biológicas en las que se manifiesta:
• • • •
Reproducción.
Desarrollo de huevos.
Crecimiento.
Maduración.
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Evaluación del efecto crónico se hace a través de:
Pruebas de toxicidad crónica para determinar la CE 50.
Otros parámetros
•
Concentración del Efecto No Observado (CENO)
•
Concentración de Efectos Mínimos Observables (CEMO ) ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
Un efluente, con bajas concentraciones de tóxicos, vertido en forma continua en un cuerpo receptor expondrá en forma permanente a los organismos a los tóxicos y puede provocar efectos crónicos.
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4. Métodos ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
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Los métodos empleados para evaluar la toxicidad de efluentes se encuentran estandarizados y metodológicamente.
bien Tales establecidos como los protocolos aprobados por la entonces SECOFI.
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4.1 Principios básicos ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Componentes de una prueba de toxicidad típica
Serie de
y organismos de prueba
cuantificados
Calcular el valor de la dosis que promoverá la mortalidad o expresión del
efecto esperado ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
La respuesta de los organismos, se evalúa mediante la cuantificación de determinado efecto (muerte, inhibición en el crecimiento, etcétera), la magnitud depende de la dosis aplicada del tóxico.
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Controles Normalmente, el involucra el diseño de las pruebas de toxicidad análisis de una solución estándar conocida como:
•
Control positivo o tóxico de referencia y un
•
Control negativo ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Control positivo o tóxico de referencia Permite el control de la sensibilidad de la especie debido a que la respuesta del organismo se encuentra previamente establecida.
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Control negativo Medio líquido óptimo para el desarrollo de las especies de prueba.
Permite mostrar que los organismos con los que se desarrolla la determinación son sanos y metabólicamente estables.
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Para cada grupo determinado el taxonómico probado, se ha tiempo mínimo de exposición necesario para generar una respuesta biológica:
•
96 horas de exposición en peces, y 72 horas para algas, son suficientes para que el efecto agudo se manifieste.
•
Para las Daphnias, el tiempo de normalizado es de 48 h.
exposición
•
Para las pruebas con bacterias el tiempo es de 5 a 15 minutos.
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5. Colecta de muestras ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
La toma de muestras para el análisis de: instantáneas se sugieren
Descarga con régimen de intermitencia.
Descargas provenientes de tratamiento con
periodos de residencia superiores a catorce días.
Descargas cuya variación de toxicidad es conocida.
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La toma de muestras compuestas se sugiere cuando se tienen limitaciones de tipo económico o de disponibilidad de tiempo.
Si se utilizan muestras compuestas hay que tener en cuenta que:
Se trata de un valor medio.
Subestima la toxicidad del efluente en los picos máximos y mínimos.
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5.1 Preservación de muestras ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Las muestras deben ser colectadas en frascos nuevos de vidrio ámbar, polipropileno o polietileno, de boca angosta y tapa de rosca de baquelita y contratapa de teflón. En caso de no contar con estas tapas puede usarse papel aluminio.
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El material tendrá que ser preparado con enjuagues previos:
•
Ácido nítrico 1N
•
Agua destilada o desionizada.
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La muestra debe llenar en su totalidad el recipiente.
Debe evitarse la formación de burbujas en el interior de los frascos, y el burbujero durante la toma de muestra.
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El análisis debe ser efectuado, preferentemente, de inmediato después de la colecta. De no ser posible, el inicio de la prueba tiene que ser antes de las 48 horas posteriores al muestreo. La muestra debe mantenerse en refrigeración (4 ± 2 ºC) a partir de la colecta y no se le añaden preservadores.
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6. Resultados ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA
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Los valores numéricos de la toxicidad aguda o crónica (CE 50 , CL 50 , CEMO y CENO) expresan una relación inversa, es decir, cuanto más pequeño es el valor, mayor es la toxicidad del efluente o de la sustancia.
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Para el manejo de la información como puede ser la determinación de la carga tóxica, es conveniente transformar los valores obtenidos en Unidades Toxicidad, ya sea aguda o crónica.
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Transformación en unidades de toxicidad aguda UTa=100/ CE 50 o CL 50 Transformación en unidades de toxicidad crónica UTc=100/CENO Estas expresiones son directas, es decir, cuanto mayor sea el valor numérico, mayor es la toxicidad.
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6.1. Estimación del potencial de impacto ambiental ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Las pruebas de toxicidad pueden ser empleadas para la evaluación del impacto de una sustancia o efluente en un cuerpo receptor. Se compara la concentración de efecto tóxico (CE 50 o CL 50 ), obtenido a partir de las pruebas de toxicidad, con la concentración del efluente una vez que se ha diluido en el cuerpo receptor.
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Protección del ambiente acuático Criterio de Concentración Máxima (CCM). Toxicidad aguda. Criterio de Concentración Continua (CCC). Toxicidad crónica. ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
CCM • CCM = 0.3 UTa.
• El factor 0.3 se usa para ajustar el valor típico de CE 50 o CL 50 a CL 1 .
• CL 1 (Concentración que provoca la mortandad de sólo el 1% de la población expuesta).
• El factor se determinó a partir del análisis de cerca de 500 efluentes (EPA).
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CCC • CCC
UTc.
Esto aplica cuando las pruebas de toxicidad se llevaron a cabo con tres organismos de prueba (tanto para CCC como para CCM).
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Ajuste por incertidumbre
Cuando la toxicidad se evalúa en menos de tres especies, el resultado obtenido con la especie más sensible tendrá que ser dividido entre 10. En este caso: CCM = 0.03 UTa CCC
0.1 UTc
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Relación Aguda Crónica (RAC)
•
Se utiliza para extrapolar la toxicidad concentración de crónica a partir de datos de toxicidad aguda.
•
Expresa la relación entre la concentración de un efluente o sustancia que causa toxicidad aguda en una especie y la provoca toxicidad concentración que crónica en la misma especie.
RAC = CL 50 /CENO ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Relación Aguda Crónica (RAC)
•
Cuando no se cuenta con mediciones de toxicidad crónica (no se mide CENO), el resultado de toxicidad aguda de la especie más sensible se divide entre un factor de 10 RAC = CE 50 /10 o CL 50 /10.
•
El uso de este factor permite llevar a cabo el monitoreo de forma económica, pero debe ser validado.
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Ejemplo 1. Para efluentes en operación.
Una descarga es la única fuente de contaminación en un cuerpo receptor. Se ha evaluado la toxicidad con tres especies de prueba distintas, una de ellas presentó mayor sensibilidad. La carga tóxica del efluente, una vez vaciada y mezclada en el cuerpo receptor ¿representa un riesgo para el cuerpo receptor?
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Ejemplo 1. Para efluentes en operación.
Gasto medio del efluente (Q e ) = 2 L/s.
Gasto crítico del cuerpo receptor ( 7 ,Q 10 ) = 30 L/s.
Toxicidad aguda en el efluente CE 50 = 3.6 %.
Determinamos la concentración del efluente en el cuerpo receptor (CER).
CER = Q e /(Q e + 7 ,Q 10 ).
CER = 2/(2 + 30) X 100 = 6.25 %.
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Ejemplo 1. Para efluentes en operación.
En este caso la concentración del efluente, una vez mezclado, en el cuerpo receptor es de 6.25% y es mayor que la CL 50 (3.6%), por lo tanto se espera toxicidad aguda en el cuerpo receptor.
Se determina el valor de la CE 50 que el efluente deberá alcanzar para evitar riesgos de toxicidad crónica al sistema.
Se estima el valor de CER a partir de los valores de toxicidad: CER
CE 50 /10, o CER
CENO.
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Ejemplo aplicable para efluentes en operación.
Como no se determinó CENO, entonces CER
CE 50 /10 6.25
CE 50
CE 50 /10 6.25X10
CE 50
62.5 % El resultado indica que un valor de toxicidad aguda en el efluente de 62.5 % de CE 50 o su equivalente UTa= 1.6 garantiza la ausencia de efectos tóxicos crónicos en el cuerpo receptor.
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Ejemplo 2. Aplicable para industrias aun no instaladas en el cuerpo receptor .
¿Cuál es la carga tóxica máxima (CL 50 o CE 50 ) del efluente que puede permitirse sin que se llegue a exceder los valores de CCM y CCC?
Gasto medio del efluente (Q e ) = 2 L/s.
Gasto crítico del cuerpo receptor ( 7 ,Q 10 ) = 30 L/s.
CCM = 0.3 UTa.
CCC = 0.1 UTc.
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Ejemplo… (toxicidad aguda).
Concentración permisible en el efluente (CPE) CPE aguda = Criterio de concentración seleccionado X Fd.
Fd = Factor de dilución ( 7 ,Q 10 + Q e )/Q e.
Criterio de concentración seleccionado: CCM (0.3 UTa) Sustituyendo Fd = (30 + 2)/2 = 16 CPEa = 0.3 UTa X 16 = 4.8 UTa.
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Ejemplo… (toxicidad aguda) .
La toxicidad aguda permisible deberá ser menor que 4.8 UTa (UTa = 100/CE 50 ) Despejando CE 50
20.83 % ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Ejemplo… (toxicidad crónica).
Concentración permisible en el efluente (CPE) CPE crónica = Criterio de concentración seleccionado X Fd.
Fd = Factor de dilución ( 7 ,Q 10 + Qe)/Qe.
Criterio de concentración seleccionado: CCC (1 UTc) Sustituyendo CPEc = 1 UTc X 16 = 16 UTc.
La toxicidad crónica permisible deberá ser menor que 16 UTc (UTc = 100/CENO) ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Ejemplo… (toxicidad crónica).
Despejando CENO
6.25 % La toxicidad crónica no deberá exceder de 16 UTc, o de su equivalente de 6.25 % de CENO. ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Protocolos de prueba ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Daphnia magna
La exposición de neonatos de 24h de edad de Daphnia magna a soluciones con materiales tóxicos puede llevar a la muerte de los mismos. Esta prueba se usa para evaluar toxicidad de sustancias químicas puras, aguas residuales domésticas e industriales, muestras de aguas tratadas o no tratadas, aguas subterráneas y lixiviados.
superficiales, ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Protocolo de prueba con Daphnia magna
CULTIVO LECTURA DE RESULTADOS 50 mL Neonatos <24 h ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
PREPARACIÓN DE LA PRUEBA
1. PREPARACION DE DILUCIONES AGUA DURA Aforar a 100mL 6,25 mL 12,5 mL 25 mL 50 mL 100 mL 100 mL MUESTRA Concentración 100% 100 mL A 100 mL A 100 mL A 100 mL A 100 mL A 100 mL A Vaciar 30 mL en cada vaso ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
2. PREPARACIÓN DE PRUEBA 22 ± 2 ° C, e iluminación 800 lux ± 10% por 48 h Agregar 10 organismos a cada vaso Daphnias de <24 h de nacidos 8h / 16 h RÉPLICAS
50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL
CONTROL POSITIVO (Cr +6 ) CONTROL NEGATIVO
50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL 50 mL
6.25%
50 mL 50 mL 50 mL
12.5% 25% CONCENTRACIONES 50 %
50 mL
100% ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Selenastrum capricornutum (Rapidocelis subcapitata)
Es un alga verde unicelular, usada extensamente para trabajo de bioensayos, es apropiada como alimento para invertebrados tales como Daphnia tener un doble por lo que puede propósito en el laboratorio.
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Protocolo de prueba
Selenastrum capricornutum (Rapidocelis subcapitata)
CULTIVO PREPARACIÓN DE LA PRUEBA LECTURA DE RESULTADOS ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Protocolo de prueba
Selenastrum capricornutum (Rapidocelis subcapitata)
1. PREPARACION DE INOCULO ALGAL Conteo del número de células por microscopía óptica con cámara Neubauerl Adición de 18ml de medio nutritivo enriquecido (18x) Dilución del cultivo para obtener 2mL
Cultivo de R. subcapitata (S. capricornutum)
de 4 a 7 días en desarrollo de fase exponencial 2. MÉTODO DE DILUCION DE MUESTRAS CONTROL C 5mL Muestra 1 C 2 C NaHCO 3 3 /L) C 4 2.5 mL solución. amortiguadora Transferencia secuencial de 2.5mL Mezclar Mezclar Mezclar Mezclar C 5 Eliminar 2.5 mL con 2.6 x 10 6 células Inóculo con 2.6 x 10 5 células P 1 Q 1 R 1 S 1 T 1 SERIE 1 RÉPLICAS SERIE 2 P 2 Q 2 R 2 S 2 T 2 SERIE 3 3. PREPARACIÓN DE PRUEBA P 3 100% Q 3 50 % R 3 25% S 3 12.5% T 3 6.25% Agregar 100µL a cada celdilla ((( ))) Agitación tres veces por día o en continuo.
100% 50 % 25% 12.5% 6.25% Iluminación 4000lux ± 10% por 72h ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Vibrio fischeri
Bacteria compuestos efecto luminiscente.
Los tóxicos ejercen su sobre las estructuras celulares y sus funciones biológicas, básicas para cualquier organismo vivo, incluidas las bacterias. En el caso de la bacteria Vibrio fischeri, su luminiscencia se inhibe de proporcional contaminantes forma a la presencia tóxicos.
directamente de ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL ANTERIOR
Protocolo de prueba con Vibrio fischeri
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Agente tóxico
•
Un pesticida
•
Una vitamina
•
Un metal pesado
•
Una muestra de un efluente con contaminantes químicos ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Diluciones
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Periodo de exposición
Es el lapso en el que los organismos de prueba se exponen al tóxico; depende de la especie utilizada (especificado en el protocolo de prueba) y del tipo de efecto evaluado (agudo o crónico).
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• Muerte.
Efectos medidos
• Disminución en la luminiscencia (
Vibrio fischeri
).
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Efectos tabulados
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Efectos graficados
% EFECTO 100
y
80 60 40 20 0 0 20 Gráfico de la relación efecto 40 60
x
80 100 DOSIS% ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Efectos graficados
y
% EFECTO 100 80 60 40 20 0 0 1 CE 50 Linealización con uso de escala logarítmica para la dosis y obtención del la pendiente y ordenada al origen.
x
2 Log DOSIS%
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Obtención de la ecuación
% EFECTO
y
100 80 60 40 20 y = a + bx 0 0 a = intersecto u ordenada al origen.
b = pendiente.
Sustituyendo : 1 CE 50
x
2 Log DOSIS% y= - 42.8771 + 66.4385 (X) ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Obtención de la CE
50 y= - 42.8771 + 66.4385 (X) Si deseamos saber el valor de X cuando y = 50 (CE 50 %) Entonces: X= 50- (- 42.8771) = 1.3979409
66.4385
X= anti log 1.3979409
X= 25 ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
Hydra attenuata
normal
(N)
Tentáculos con bulbos
(B)
Tentáculos acortados
(C)
(B-C) = Expresiones de subletalidad
Estado de tulipán
(T)
Desintegración
(D)
(T-D) = Expresiones de letalidad ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
¿Dolor de cabeza? ¿Fiebre? ¿Dolor inflamatorio? ¿Dolores musculares? Todos estos síntomas pueden tratarse con ácido acetíl salisílico. ULTIMA DIAPOSITIVA MOSTRADA MENU PRINCIPAL
La falta de control en la ingesta de ácido acetil salisílico puede llevar a efectos adversos como son la agresión de la mucosa gástrica, y las hemorragias, especialmente la hemorragia digestiva alta, y en menor medida el accidente cerebro vascular hemorrágico.
Otro efecto indeseable se relaciona con la sensibilidad de un individuo al medicamento.
Por ejemplo una reacción alérgica frente a una dosis considerada segura.
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Efecto del glifosato aplicado en diferentes dosis a semillas de lechuga.
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Efecto de diferentes sustancias sobre las semillas de lechuga.
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Efecto del glifosato aplicado en diferentes dosis a semillas de lechuga.
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Efecto de diferentes sustancias sobre las semillas de lechuga.
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