Técnica histológica y sus aplicaciones Capítulo 2.

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Transcript Técnica histológica y sus aplicaciones Capítulo 2.

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CAPÍTULO 2.
TÉCNICA HISTOLÓGICA Y SUS APLICACIONES

Capítulo 2.
Técnica histológica
y sus aplicaciones

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TÉCNICA HISTOLÓGICA Y SUS APLICACIONES

Figura 2-1. Resalta en esta imagen las diferencias que
la tinción de hematoxilina y eosina permite identificar:
núcleos en morado y citoplasma en rosa (páncreas).

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Figura 2-2. La técnica tricrómico de Masson
identifica el tejido conjuntivo (colágeno) en color
azul, los núcleos en negro y la queratina en rojo
(piel de axila).
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Figura 2-3. En este
corte de tendón, la
técnica de tricrómico
de Gallego tiñe al
colágeno de verde y
los núcleos en azulnegro.

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Figura 2-4. La técnica de tricrómico de Gomori da el colágeno
en verde-azul, los núcleos en azul o negro, las células β del
páncreas, rosa y los eritrocitos en color naranja (páncreas).

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Figura 2-5. Las fibras elásticas resaltan en color
negro con la tinción de Verhoeff. En esta arteria
elástica (aorta) es muy notoria su
identificación en la capa media.
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Figura 2-6. Con la
tinción de Mallory el
tejido conjuntivo se
ilumina en tonos de
azul, de igual manera
que el cartílago
(pulmón).

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Figura 2-7. Cuando se aplica la técnica de GrosBielschowsky se observan los axones en negrorojizo y las neurofibrillas en negro (nervio
periférico).
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Figura 2-8. La técnica
Río-Hortega tiñe las
neurofibrillas y cuerpos
neuronales en negro
(corteza cerebral).

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Figura 2-9. Con la tinción de Grimelius, las
células del sistema neuroendocrino difuso
resaltan en color negro (intestino).
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Figura 2-10. En esta
imagen de corteza
cerebral, las fibras
nerviosas se ven
negras y el resto en
color café.

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Figura 2-11. Con la técnica de Gordon-Sweet
en hígado, las fibras reticulares se marcan en
color negro.

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Figura 2-12. La técnica con Luxol
tiñe mielina en azul y cuerpos
neuronales en rosa.

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Figura 2-13. Con la
técnica de Nissl los
cuerpos neuronales y
la mielina se tiñen de
azul (médula espinal).

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Figura 2-14. La técnica de Kluver Barrera muestra
mielina en azul y las otras estructuras en rosa o
morado (corteza cerebral).

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Figura 2-15. La glándula sublingual marca
en rosa las mucosustancias
de sus ácinos mucosos.

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Figura 2-16. Otra tinción para mucosustancias
ácidas es la técnica de azul alciano pH 2.5, lo que
es muy notorio en este corte de estómago.

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Figura 2-17. Cuando el pH es de 1, las
mucosustancias más sulfatadas
se tiñen de azul (estómago).
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Figura 2-18. Con la tinción de Wright, en la sangre se
pueden identificar los leucocitos, como en esta imagen
en la que se aprecia un linfocito y un eosinófi lo con
sus gránulos rojizos.
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Figura 2-19. Cuando se quiere identificar
la presencia de hemosiderina se recurre al
método de Perls, que la tiñe en azul
(coágulo en la luz de un vaso).
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Figura 2-20. En el caso de la melanina, la tinción
de Fontana Masson la tiñe en negro, como es el
caso del tejido aquí observado;
los núcleos se tiñen de rojo (melanoma).
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Figura 2-21. La lipofuscina en miocardio
se identifica con facilidad utilizando la
técnica de PAS, que la hace ver
rojo-magenta (corazón).

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Figura 2-22. La
belleza de los
cromosomas en
movimiento se
identifica de forma
maravillosa con la
técnica de Feulgen
(raíz de lirio).

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Figura 2-23. A fin de identificar a los bacilos ácido-alcohol
resistentes en el pulmón, se emplea la técnica de Ziehl-Neelsen
que los tiñe de rojo (pulmón).
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Figura 2-24. Para
identificar hongos,
la técnica de
Grocott los
resalta en color
negro (pulmón).

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