La rata como animal de experimentación en microcirugía
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La rata como animal de
experimentación en microcirugía
Conceptos generales
Jesús Gracia Romero. F.E.A. Cirugía
Infantil. Hospital Miguel Servet.
La rata como animal de
experimentación en microcirugía
• Práctica en dedo de guante y gasa.
• Práctica de disección "in vivo"
• Disección aorta-cava / Disección nervio
ciático / Disección de carótidas
• Cirugía vascular:
- Anastomosis termino-terminal de aorta
abdominal y carótida
- Término-terminal de arteria/vena
femoral
- Término-lateral arterial (carótidas)
y venosa (porto-cava)
• Cirugía nerviosa
La rata como animal de
experimentación en microcirugía
• Utilización del microscopio y de la
gafa-lupa
• Instrumental. Manejo. Mantenimiento y
cuidados
• Materiales de sutura
• Disposición general del material,
postura del cirujano, etc.
• Anestesia del animal. Colocación en la
tablilla
• Vías de abordaje. Colocación de
separadores. Posibilidades quirúrgicas
La rata como animal de experimentación en microcirugía
• Papel del veterinario
• Espacio quirúrgico adecuado. Área subdividida en otras
especificas: jaulas de espera o de recuperación..
• Instrumentos estériles. Desinfección de las tablas, etc.
• Evaluación prequirúrgica. Tiempo de ayuno.
• Preparación del animal. Lavado, rasurado amplio, aplicación
de antiséptico. Vigilar la aplicación de soluciones
alcohólicas. Aplicación de paños estériles. Preparación del
cirujano: Lavado de manos. Guantes. Mascarilla. Gorro.
• Marcado del animal
• Valoración del animal durante la cirugía. Sangrado.
Profundidad de la anestesia.
• Temperatura corporal. Botellas de agua caliente. Tablilla
calefactada. Lavados con suero caliente.
• Observación durante el despertar. Mantenerlo caliente.
Lámpara de calor.
• Historia clínica de cada animal, en su jaula.
• Analgesia postoperatoria
La rata como animal de
experimentación en microcirugía
• ANESTESIA
- Por inhalación: éter anestésico
- I.M. (ketamina 50 mg.(5 cc), valium 10
mg (2 cc) y atropina 1 mg. (1 cc). 1 cc x
300 g. de rata
- Intraperitoneal. Ketamina 30 mg/kg +
Valium 4 mg/kg + Atropina 1mg/kg ó
Pentotal 40 mg/kg + Atropina 1 mg/kg.
La rata como animal de
experimentación en microcirugía
• MATERIAL MICROQUIRÚRGICO
- Pinzas de relojero rectas
- Pinzas de relojero anguladas 45º (sirve de
porta)
- Tijeras tipo Wescott
- Microclamps vasculares
- Suturas 9 y 10 ceros.
Cada alumno debería disponer de:
• MATERIAL QUIRÚRGICO
- Pinzas de relojero rectas
- Pinzas de relojero anguladas 45º
- Tijeras microquirúrgicas tipo Wescott
- Microclamps vasculares
- Suturas 9 y 10 ceros
Tablilla-soporte de la rata. Esparadrapo de fijación. Jeringa con
aguja de insulina. Separadores “automáticos”. Bolitas de
algodón para hemostasia. Gasas. Vaso-recipiente para el
instrumental. Pinza de disección con dientes. Tijera “macro”.
Microscopio ó gafa lupa.
Vías de abordaje:
Sutura arterial termino-terminal
• Evitar pinzar todo el espesor del vaso.
Coger la adventicia
• Disecar y ligar las ramas colaterales
• Disecar suficiente longitud de vaso para
poner los clamps
• Vaciar la sangre que queda en las bocas
• Seccionar la adventicia traccionando de
ella a modo de tienda de campaña
• Dilatar la luz del vaso, sin desgarrar la
intima
• Colocar debajo un trocito de goma de globo
para contrastar
• Seccionar el vaso
• suturar
Sutura arterial
termino-terminal
Sutura arterial termino-terminal
• Aproximar las bocas, aproximando el clamp
• Afrontar lo mas posible las bocas
• Primer punto en cara antero-lateral. Nos
servirá para traccionar de el. Los nudos
deben hacerse planos
• Segundo punto a 120 grados del primero
• Uno o varios puntos entre los dos primeros
• Después se rota el clamp 180 grados, para
suturar la cara posterior
• Se dan puntos promediando
Sutura
arterial
terminoterminal
Sutura arterial termino-terminal
Para valorar la sutura
• Quitar el clamp
• Hacer compresión suave, 5 minutos
• Vaciar
un
segmento
del
vaso
distalmente a la anastomosis, con dos
pinzas
• Observar el relleno del segmento
vaciado
Sutura
arterial
terminoterminal
Anastomosis
porto-cava
Sutura
nerviosa