Transcript Stáhnout
SPECIÁLNÍ PŘEDNÁŠKA 17. prosince Bohumil Fafílek, Ph.D. Slavo Kinský, Ph.D. Ůstav molekulární genetiky, Praha GENEROVÁNÍ TRANSGENNÍCH MYŠÍCH LINIÍ A EDITOVÁNÍ GENOMU POMOCÍ TALENOVÝCH NUKLEÁZ … následovat bude testík z předchozí přednášky 4.3. 11.2. 21.1. Vždy středa 9:45 – 12:00, posluchárna B2 Písemný test, kombinace výběrových a volných odpovědí 6. a 7. ledna, od 9:00 Časový rozpis bude na webu katedry molekulární biologie, případné preference na určitý čas hlaste předem. Molekulární biologie 10. Mutace a opravy DNA, rekombinace (kapitola 23, 24) MUTACE • změny genetického materiálu daného organizmu (dědičné u potomků dané buňky) • většina mutací není letální, ani se na fenotypu neprojeví. Některé mutace dokonce přinášejí organizmu výhodu. • mutace v somatických buňkách nejsou dědičné, pouze mutace v zárodečných buňkách • vetšina mutací je recesivních, efekt vykompenzován druhou alelou Každý člověk nese v genomu 75-100 škodlivých recesivních alel, z toho 8 letálních. Kdyby člověk existoval jako haploid, byl by dávno mrtvý! K tomu má každý člověk v genomu asi 20.000 změn, které jsou ale neškodné Nulová mutace – úplně chybí produkt daného genu, loss of function Tichá mutace – nemá vliv na funkci daného genu, bez fenotypu, např. ve třetí pozici kodonu, v intronech, v intergenové DNA Substituce báze Inserce Delece uvnitř genu nebo v regulačních sekvencích Inverse Duplikace Translokace Substituce báze bodová mutace Missense mutace – změní kódovanou aminokyselinu v proteinu neutrální mutace (nahrazení aminokyselinou s podobnými vlastnostmi) radikální mutace (nahrazení aminokyselinou s velmi rozdílnými vlastnostmi, vliv na strukturu a tím funkci proteinu) Aminokyseliny konzervované u rozdíných organizmů budou dost možná v aktivním místě proteinu a jejich mutace bude mít závažnější důsledky než mutace ostatních aminokyselin. Kondicionální mutace – efekt záleží na podmínkách, ve kterých organizmus žije např. teplotně sensitivní mutace – projeví se jen při určitých teplotách Mutace v melaninu, která ho dělá aktivnějšímv chladnějších částech těla. Nonsense mutace – zavedení předčasného stop kodonu v mRNA např. UCG ser UAG stop Prokaryota – protein je syntetizován až do předčasného stop kodonu, pak uvolněn, ale protože většinou není správně složený, je degradován Eukaryota – nonsense mediated mRNA decay, zničí se rovnou mRNA Nonsense mutace = většinou efekt jako nulová mutace Delece Efekt větší delece může buď inaktivovat geny nebo i jejich expresi zvýšit (delece vazebného místa pro represor) Delece jedné či několika bazí – frameshift ve čtecím rámci nebo vliv na splicing, vliv na vazbu transkripčních faktorů atd. Frameshift -1 Frameshift -2 Frameshift -3 Inzerce Inzerce mobilního genetického elementu (transposony, retrotransposony), virů, nebo chemickými mutageny či chybou DNA polymerázy zastavení exprese zvýšení exprese Inverze Translokace Duplikace Spontánní mutace chyby v DNA replikaci, spontánní chemické změny na DNA (s nízkou frekvencí, se zvyšující se teplotou frekvence roste) Indukované mutace Mutageny: chemické látky, radiace, teplo Chemické mutageny: EMS (ethyl methane sulphonate) • • alkylační činidlo, přidává ethylové skupiny bazím pro in vivo mutagenezi živých buněk Dusitany (NO2-) • • • přeměna aminoskupin na hydroxyskupiny mutace 5-methyl cytosinu na thymin pro in vitro mutagenezi plazmidů E250 – dusitan sodný Analogy bází • 5-bromouracyl • inkorporuje se do DNA během replikace jako thymin • existuje ve dvou flip-flop stavech, z nichž jeden se páruje s A a jeden s G • problém při následné DNA replikaci, kdy slouží jako templát Interkalační činidla • acridine orange, acriflavin, ethidium bromid • vmezeří se mezi dvě báze DNA • DNA polymeráza během replikace pak rozezná tuto látku jako skutečnou bázi a vloží extra nukleotid do DNA, frameshift… Teratogen – látka způsobující vývojové vady embryí (buď jako mutagen nebo jinými mechanizmy) Mutace způsobené radiací: 1) elektromagnetické vlnění s velmi vysokou frekvencí (UV) - UV světlo má vlnovou délku 100-400nm, báze absorbují nejvíce při vlnové délce 254nm, tvorba thyminových dimérů, problém při replikaci - většina UV ze slunce zachycena ozonovou vrstvou, pokud není poškozená… Thyminové diméry thymin thyminový dimer 2) ionizační záření (X-ray, g-ray) - přímé poškození DNA = reakcí záření s DNA (hlavně ds zlomy) - při styku s vodou či jinými látkami indukují tvorbu iontů a volných radikálů (hlavně OH.) = nepřímé poškození DNA SPONTÁNNÍ MUTACE Mutace vzniklé chybami DNA polymerázy • proofreading aktivita DNA polymerázy není dokonalá, s malou frekvencí zůstávají behěm replikace v DNA chyby • u E.coli behěm replikace leading strandu zařadí polymeráza průměně 1 špatnou bázi z 10 milionů zreplikovaných, u lagging strandu 20x více (protože DNA PolI má má horší proofreading aktivitu) • navíc může docházet i k ‘uklouznutí’ polymerázy (polymerase slipping): zavedení delecí nebo inzercí Mutace kvůli párování podobných úseků DNA a následné rekombinaci přímé repetice na DNA rekombinace (mezi dvěma totožnými nebo velmi podobnými sekvencemi) DELECE a DUPLIKACE DELECE obrácené repetice na DNA INVERZE Mutace kvůli tautomerizaci bazí • každá báze existuje jako keto a enol forma – tautomery • ve vzájemné rovnováze, ale značně převažují keto formy • pokud při replikaci báze zrovna v enol formě, bude zařazena v nesprávném párování Mutace kvůli spontánní chemické instabilitě bazí A, G a C mohou pomalu spontánně ztrácet své aminoskupiny = DEAMINACE 100 bazí za den v každé eukaryotní buňce! záměna C za T Cytosin je horkým místem mutací v DNA ! deaminace G a A mnohem vzácnější Mutace kvůli spontánní chemické instabilitě bazí A a G se mohou spontánně hydrolyzovat od DNA kostry = DEPURINACE 5000 bazí za den v každé eukaryotní buňce! Poškození oxidativním stresem (volnými radikály, např. během buněčného metabolismu) Formace 8-oxoguaninu (= 8-hydroxyguanin) párování s A záměna G/C za A/T Poškození neenzymatickou metylací S malou frekvencí může donor metylačních skupin (S-adenosyl methionin) spontánně metylovat báze adenin 3-methyladenin OPRAVY DNA Prokaryota Proofreading aktivita DNA polymeráz se snaží eliminovat špatné párování během replikace Mismatch v párování bazí, jejich chemické modifikace nebo výskyt analogů bazí vede k distorci DNA Mismatch repair system a excision repair system detekují tyto změny struktury DNA spíše než specifické chemické změny Jak reparační systémy poznají, která ze dvou nesprávně spárovaných bazí je ta správná? Jak reparační systémy poznají, která ze dvou nesprávně spárovaných bazí je ta správná? Je třeba umět rozeznat při replikaci parentální DNA vlákno od nově replikovaného Bakteriální DNA metylázy metylují parentální vlákno DNA dam (DNA adenine methylase) - GATC dcm (DNA cytosine methylase) – CCAGG nebo CCTGG 6-methyladenin a 5-methylcytosin se párují správně, neindukují reparační odpověd’ několik minut po replikaci je nová DNA šroubovice hemimetylovaná nastupují reparační enzymy a hledají chyby v nemetylovaném vlákně dam a dcm metylázy metylují i nové vlákno DNA mismatch repair system (MMR system) rozpoznání chybné báze pomocí MutL , MutS a MutH proteinů zavedení zlomu v novém DNA vlákně odstranění úseku DNA kolem chybného párování dosyntetozování správné báze DNA polymerázou III (nebo d u eukaryot) Nucleotide excision repair system (NER system) • nejčastější systém oprav poškozené DNA • rozpoznává změny struktury DNA, ale méně senzitivní než MMR (změny struktury musejí být více nápadné) • především opravy DNA poškozené UV = thyminové dimery, kroslinkované báze rozpoznání chybné báze pomocí uvrA,B,C proteinů zavedení dvou zlomů okolo T=T odstranění úseku DNA kolem chybného párování a dosyntetizování správné báze DNA polymerázou I Base excision repair system (BER system) • rozeznává specifické chemické změny v DNA, která se neprojeví na změně struktury DNA • opravuje báze, které se normálně v DNA nevyskytují (není pochyb o tom, že jsou špatné) Deaminace adeninu na hypoxantin, guaninu na xanthin, cytosinu na uracil: DNA glykosyláza odštěpí chybnou bázi, vznikne místo bez báze (AP místo) AP endonukleáza štěpí kostru DNA DNA polymeráza I dostaví mezeru Oxidace guaninu na 8-oxoguanin (při oxidativním stresu): MutT fosfatáza odstraňuje fosfátové skupiny z volných oxoGTP nukleotidů, aby se nemohly inkorporovat do DNA MutM glycosyláza odstraňuje oxoG z DNA (pokud se páruje správně s C) MutY glycosyláza odstraňuje A z DNA pokud se páruje s oxoG Vzniklé AP místo dostavěné DNA polymerázou I Very short patch repair system Thymin vzniklý spontánní deaminací 5-methyl cytosinu (ne během replikace DNA) je horkým místem mutací (změna CG naTA) • u E.coli je 5-methylcytosin hlavně v místech metylovaných dam a dcm • pokud se T vyskytne v sekvencích rozeznávaných dam a dcm metylázami (CCAGG a CCTGG), je odstraněn Vsr endonukleázou Sebevražedné demetylázy Metylové skupiny na kyslíku u O6-methylguaninu a O4-methylthyminu odstraněny sebevražednými enzymy, které metylovou skupinu přenesou na sebe. Báze je tím rovnou opravena, ale enzym lze použít pouze jednou. Ostatní metylované báze odstraněny DNA glycosylázami Photoreaktivační systém oprava thyminových dimerů (opravy také pomocí NER systému, Uvr proteiny) Přímá oprava, rozštěpení dimeru, bez použití polymerázy Fotolyáza – absorbuje viditelné světlo o vlnové délce 350-500nm (modré) a jeho energii používá rozštěpení thyminového dimeru = fotoreaktivace Opravy pomocí rekombinace Ne všechny chyby DNA se podaří odstranit před průběhem replikace. Pokud mutace brání postupu DNA polymerázy (například přítomnost thyminových dimerů), polymeráza odpadne a začne syntézu opět o kousek dál Vznikne jednořetězcová mezera v replikovaném chromozomu RecA Rekombinace mezi ‘zdravým’ vláknem na druhém chromozomu a vláknem s mezerou Mezera dostavena podle zdravého vlákna, thyminový dimer sice neopravený, ale oba chromozomy zreplikovány bez mezer SOS reparační systém Pokud je DNA poškozená na mnoha místech a během replikace vzniká hodně jednovláknových oblastí, SOS systém umožní průběh replikace dosyntetizováním těchto úseků, i když to pravděpodobně zavede mnoho mutací RecA se aktivuje vazbou na ssDNA RecA rozštípe LexA represor lexA dimer blokuje expresi SOS genů lexA je zničen, spustí se exprese SOS genů Pouze u bakterií, pro Eukaryota příliš nebezpečné replikovat buňky s mnoha mutacemi (rakovina), raději apoptoza nebo inhibice dělení např. DNA polymeráza V, nemá proofreading activitu, takže můž replikovat i thyminové dimery a místa bez bází (AP místa) Oprava spřažená s transkripcí (transcription coupled repair) Pokud je DNA hodně poškozená, může bránit průběhu transkripce, RNA polymeráza se zastaví, začne oprava templátového vlákna Bakterie: TRCF protein rozpoznává zastavenou polymerázu (transcription repair coupling factor) Eukaryota: TFIIH rozvolňuje DNA během transkripce, pokud’narazí na poškozenou DNA, naváže proteiny excision repair systému (NER) Opravy u Eukaryot Systémy podobné jako u prokaryot, ale méně prozkoumané Mutace v reparačních genech jsou doprovázené vyšší výskytem rakoviny: hMSH2 (human MutS homologue 2) – mismatch repair system, vznik malých delecí a inzercí BRCA1 (breast cancer A1) – zlomy dsDNA, transkripční reparace Xeroderma pigmentosum mutace v genech pro excision repair system, vysoká senzitivita kůže k UV záření Problémy s opravami DNA vedou ke zvýšené náchylnosti k rakovině a k předčasnému stárnutí Wernerův syndrom Předčasné stárnutí způsobené mutací ve Wnr genu – specifické helikázy používané při opravách DNA DNA damage checkpoints Při každém dělení se na přechodech G1/S a G2/M a také v S kontroluje intaktnost DNA ATM kináza – detekuje dvojřetězcové zlomy ATR kináza – detekuje zastavené replikační vidličky Fosofrylují celou řadu proteinů vedoucí k zastavení buněčného cyklu nebo apoptose např. p53 Opravy dvojřetězcových zlomů Non homologous end joining Zlomy dsDNA ionizačním zářením, chemicky nebo po vyštěpení transpozonů eukaryota 1. Vazba Ku proteinů na konce dsDNA 2. Vazba DNA-PK (DNA protein kinasy) 3. Fosforylace XRCC4, díky tomu navázání ligázy a spojení DNA Může spojit omylem i DNA, která k sobě nepatří, chromozomální translokace dsDNA zlomy možno opravit též homologní rekombinací (viz dále) Horká místa mutací Ne všechna místa v genomu jsou stejně náchylná k mutacím, některá místa mají frekvenci daleko vyšší. Vetšinou místa výskytu 5-methylcytosinu, který občas spontánně deaminuje na thymin a páruje se pak s A místo s G. Reverze fenotypu Fenotyp vzniklý určitou mutací je vrácen do normálního stavu Šance, že by daný nukleotid spontánně zmutoval zpět na původní nukleotid je velmi malá Mnohem častěji je reverze fenotypu způsobena jinou mutací, která vyruší účinek první = supresorová mutace (ať už ve stejném genu nebo v jiném) Supresorové tRNA • nabité tRNA, které ale mají zmutovaná antikodon, takže rozeznává STOP kodon (např. tRNA pro glycin, kde antikodon GAC zmutoval na AUC) Důsledkem je prodloužení i normálních proteinů, což může být problém. • Mohou částečně obnovit expresi genů s předčasným stop kodonem, běžné u prokaryot a kvasinek • Pouze pokud existuje více tRNA pro tutéž aminokyselinou, jinak by mutace kodonu byla letální REKOMBINACE Rekombinace Výměna genetického materiálu mezi chromozomy nebo nebo jinými molekulami DNA U eukaryot při meioze, při opravách DNA, u bakterií při konjugaci plazmidu crossing over – zlom v DNA a její spojení s jinou molekulou (zde dvojitý crossing over) Homologní rekombinace - mezi dvěma velmi podobnými skevencemi Nehomologní (místně specifická) rekombinace – mezi jinak nepodobnými sekvencemi, ale iniciováno na krátkém úseku homologie rozpoznávaném specifickými proteiny Holliday junction Crossing over dvou jednovláknových řetězců DNA a jeho posun podél chromozomu Následuje další štěpení a separace vláken, může a nemusí vést k výměně celých ramen na chromozomu: Holliday junction se může otáčet do dvou izomerních stavů Patch recombinant Vymění se pouze část jednoho vlákna resolváza (rekombináza) – štěpí a liguje DNA v Holliday junction True recombinant Vymění se celý zbytek chromozomu Crossing over / video http://booksite.academicpress.com/Clark/mol ecular2/anim24_crossoverformation.php Jak se homologní sekvence najdou a spárují ? Bakterie: zlom v dsDNA a invaze jednořetězcového vlákna 1. RecBCD komplex nasedá na zlomy dsDNA 2. Postupuje po DNA, dokud nenarazí na Chi sekvenci (GCTGGTGG, časté) 3. RecC odštěpí jeden z řetězců DNA 4. RecBC postupně odhaluje ssDNA s volným 3’koncem, ta se pokrývá RecA proteiny: Zlomy v dsDNA = většinou ne zlomy v genomické DNA, ale v cizorodé DNA vniklé do buňky při transformaci, transdukci viry, konjugaci ssDNA vlákno s volným 3’koncem se pokrývá RecA proteiny … a atakuje dsDNA homologní DNA molekuly Dočasné vytvoření triple helixu Vytěsněné ssDNA vlákno se pak spojí s ssDNA druhé molekuly Místně specifická rekombinace (nehomologní) Pouze krátké místo homologie mezi dvěma jinak rozdínými molekulami; pro rekombinaci musí být toto místo rozpoznáno specifickými proteiny např. integrace bakteriofágu lambda do chromozomu E.coli attP místa v bakteriofágovi, attB místa v bakterii, pouze oblast attO je uplně homologní Integráza z bakteriofágu štěpí dsDNA Eukaryota Rekombinace především během meiozy Musí se zavést zlomy v dsDNA = riskantní! Rekombinace během mitózy – k opravě zlomů v dsDNA nebo jednovláknových mezer v dsDNA Mechanismus podobný jako u bakterií Spo11 štípe dsDNA nukleázy odstraní ss vlákno a nechají vlákno s 3’koncem, pokrývá se Rad51 proteinem (jako RecA) atak homologních úseků… Genová konverze během meiozy Dvě alely téhož genu, R a r rekombinace DNA během meiózy Přeměna jedné alely genu v druhou během rekombinace a následné pravy DNA Pokud meioza proběhne před opravou DNA, vytvoří se normálně dvě R a dvě r Jinak ale reparační systémy opraví DNA náhodně, buď podle jedné alely nebo podle druhé Někdy se DNA opraví tak, že vzniknou 4 alely téhož genu, druhá alela zanikne r,r,r,r R,R,R,R PŘEDNÁŠKA 17. prosince Bohumil Fafílek, Ph.D. Slavo Kinský, Ph.D. Ůstav molekulární genetiky, Praha GENEROVÁNÍ TRANSGENNÍCH MYŠÍCH LINIÍ A EDITOVÁNÍ GENOMU POMOCÍ TALENOVÝCH NUKLEÁZ