HE技术操作规范(2)

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HE技术操作规范
广医附一院
病理科
第一步:固定
固定能防止组织自溶及腐败,尽量保持组织原貌
固定液通过以下机制稳定蛋白:
– 相互交联:甲醛与蛋白质交联
– 蛋白沉淀:蛋白变性沉淀
合理固定很重要,为了:
• 防止组织在处理中受损
• 经处理组织能易于切片
固定不当的后果
固定不当会导致手工及自动IHC及ISH检测结果
出现片状或不正常染色,从而影响免疫组化检测
结果判定
固定不全过程
– 交联过程发生较慢,很易逆转
– 若固定时间过短,会发生交联不全,组织将被下一步
的乙醇固定
– 经乙醇沉淀的蛋白其抗原结构会改变,因而不适用于I
HC及ISH检测
固定过度
– 固定时间过长可能导致假阴性检测结果
– 过度多聚化阻止了抗原暴露,因而影响抗原修复
影响固定的因素
组织类型
从标本手术切除至开始固定的时间
待检标本的体积及厚度
固定液类型 (10%福尔马林)
固定液与组织体积比 (至少10:1)
固定的时间
温度
从标本离体到开始固定的时间
为防止组织自溶,待检组织从手术离体至开始固
定之间的时间应尽可能短
– 乳腺癌最多 1小时
– 胃癌应控制在 20–30 分钟内
固定液种类
推荐10%中性缓冲福尔马林(NBF)作为乳腺
癌及胃癌组织的固定液(IHC或ISH)
– 10% NBF等同于4%甲醛溶液
– 交联简单的固定液
应使用新鲜福尔马林溶液,福尔马林贮备液应:
– 定期更换 (最多贮存6个月)
– 室温贮存
– 标记生产日期或稀释浓度以及过期日期固定不当会导
致手工及自动IHC及ISH检测结果出现片状或不正常
染色,从而影响免疫组化检测结果判定
固定时间
乳腺组织
– 用于HER2检测的手术切除组织样本(IHC或ISH检测),
一般固定6–48小时
胃组织
– 手术切除及活检组织样本,一般固定8–48小时
固定时间取决于待检组织类型--组织取样手段,
组织厚度及固定液
不同的检测程序应使用优化的相应固定时间
第二步取材
组织块的面积通常为2.0cmX1.5cm,厚度不超
过3.0mm。太大太厚的组织块常会固定不充分,
而影响脱水和制片。
第三步:脱水
目的:因为石蜡不溶于水,所以需从组织中除去
水分
梯度脱水:75%,85%、95%,100%乙醇
若无乙醇,其他溶剂例如异丙醇亦可用于脱水
第四步:透明
 因乙醇和石蜡不相溶,所以需用另外一种溶剂
 用于透明的溶剂既能同乙醇混溶,又能与石蜡混溶
 常用透明剂包括:
–
–
–
–
二甲苯
L-苧烯
氯仿
松节油(TO)
 使用“透明”该词是因组织会变为透明
第五步:浸蜡
浸蜡过程中,液体石蜡代替透明液以利于进行超
薄切片
推荐使用溶点为56–58oC的新鲜石蜡
应避免浸蜡时间过长
经合理石蜡包埋的乳腺及胃组织在进行切片之前,
可在室温下(20–25oC)无限期地贮存
组织处理仪
影响组织处理的因素
–热
 增加浸润速率
– 真空
 有助去除:
–残余空气
–之前溶剂
– 压力
 起搅拌作用
第六步石蜡包埋
将需要切片的面靠近包埋盒
小组织尽量聚集在一起
注意管腔、皮肤等组织的位置
第七步切片
切片机的种类
直推式
轮转式
切片的方式
干切
湿切
切片厚度会影响显色及检测数据分析
– 组织切片厚度标准 3–5 μm. 可用经校准过的超薄切
片机切片
切片需贴在粘合性强的载玻片上 (可使用经多赖
氨酸防脱片处理的玻片),贴片后将载玻片置于
室温下风干12-24小时或于60℃烘干1小时
– 经多赖氨酸防脱片处理的玻片
– 厂商试剂盒及/或自动化染色平台需配合指定玻片使用
 最好在HER2免疫组织化学染色检测前才开始切片
– 如果过早切片,让切片暴露在室温太久,容易造成组织细胞抗原
性受损
– 应尽可能在切片后两星期内进行染色
– 切片最长保存期为4-6星期
 切片应从以下细胞组织区域提取
– 乳腺内的侵袭性癌细胞组织
– 食管及胃交界癌的代表性癌细胞组织
 例如混合癌中的胃腺癌组织区域及非坏死或无感染区域
第八步捞片
用玻片从冷水盆上捞起蜡片,后把蜡片放在50℃
上清水上展平并捞起切片
第九步烤片
常用温度60-70℃
烤片时间:最少30分钟
57 ℃过夜
温度过高、时间过长会导致蛋白变性
温度过低、时间过短烤片不充分、石蜡不溶,拖
拉不彻底
第十步脱蜡至水
用二甲苯(或二甲苯代替品)为石蜡切片脱蜡,再
用无水乙醇梯度稀释液回水
石蜡必须彻底清除,否则将影响染色,减低特异
性染色及提高非特异性背景染色
步骤
取一黏有石蜡切片的载玻片,在室温下依序作以下操作:
1. 放在二甲苯I中浸泡10分钟
2. 放在二甲苯II中浸泡10分钟
3. 放在100%乙醇中浸泡两次,每次30秒
4. 放在95% 乙醇中浸泡两次,每次30秒
5. 放在80%乙醇中浸泡一次,每次30秒
6. 放在75%乙醇中浸泡一次,每次30秒
7. 蒸馏水洗
8. 在纸巾上轻敲载玻片沥干多余的缓冲液,用吸水纸抺干
组织周围
第十一步:HE染色(苏木素-伊红染色)
原理
利用细胞内外的酸碱度与苏木素、伊红进行化学
反应;即细胞核(酸性)与碱性苏木素进行反应
形成蓝色;细胞质(碱性)与酸性伊红进行反应
形成红色。
步骤
 二甲苯I、II各10min
 100%酒精I、II,95%酒精I、II,80%酒精,蒸馏水
各1min。
 苏木精染液15min,流水冲洗1.5min。
 0.5%盐酸酒精分化5s,流水冲洗1min。
 饱和碳酸锂水溶液1min,流水冲洗10min。
 1%伊红染液染40s,水洗 。
 80%酒精,95%酒精I、II,80%酒精,100%酒精I、
II。
 二甲苯I、II各1min 。
第十二步:封片
封片剂:中性树胶、甘油等
重要提示
 注意在任何情况下都不能让组织干透
 尽量减少封片液用量
染片结果
细胞核成蓝色
细胞质成红色
红蓝对比清晰、切片完整、没刀痕皱褶等
HE染色的关键
固定
脱蜡
染色:苏木素染色时间
0.5%的盐酸酒精分化
伊红染色
脱水情况等
感谢大家的聆听!