Vybrané metody ACh
Download
Report
Transcript Vybrané metody ACh
Vybrané metody ACh
KAPALINOVÁ
CHROMATOGRAFIE
Kapalinová chromatografie (LC)
Nejdéle známá chromatografická metoda
(Cvět). Téměř 80% známých látek lze
analyzovat pomocí LC (iontové, polární i
nepolární, mol.hm. 5-106)
Papírová chromatografie (PC) je starší technika
a byla postupně nahrazena tenkovrstevnou
chromatografií (TLC).
Pro obě techniky je stacionární fáze umístěna v
ploše. V případě PC je tvořena speciálním
papírem, u TLC tenkou vrstvou fáze na desce
(sklo, hliníková či plastová folie)
PC a TLC – stacionární fáze
V PC je stacionární fází voda sorbovaná na
papíře
V TLC stejné materiály jako v kolonové
chromatografii
Pro lipofilní – adsorbenty oxid hlinitý (alumina),
silikagel, polyamid, acetylovaná celulóza
Pro hydrofilní – celulóza, měniče iontů, křemelina,
polyamidy a chemicky vázané fáze
Desky pro TLC lze připravit v laboratoři,
přednost se dává komerčně připraveným
deskám pro klasickou TLC, HPTLC či
preparativní TLC
PC a TLC – stacionární fáze
Vrstva fáze (0,1 -0,5 mm pro analytické a 0,5 -2,0
pro preparativní účely)je nanesena na skleněné,
hliníkové nebo plastové desce.
Přilnavost k desce se zvyšuje přídavkem pojiva 0,1-10%
(sádra, škrob, polyakrylová kyselina a její soli)
Pro snadnější vizualizaci skvrn se často přidává
fluorescenční indikátor např. aktivovaný křemičitan
hořečnatý o stejném zrnění (analyt zháší fluorescenci)
Někdy stacionární fázi na desce předchází tzv.
koncentrační zóna (2-3cm) tvořená inertním
sorbentem
Pro HPTLC se používají menší sférické částice (210μm)s jednotnou velikostí nebo monolitické
ultratenké vrstvy – vysoká účinnost, délku lze
zkrátit na několik cm, vyšší citlivost (pg)
PC – mobilní fáze
Jako mobilní fáze v PC se používají směsi
rozpouštědel v závislosti na struktuře analytu.
Pro polární látky se často používají směsi butanolkyselina octová (hydroxid amonný)-voda
Pro středně polární butylacetát, diisopropylether,
chloroform s malým přídavkem polárních rozpouštědel
a vody
Pro zcela nepolární látky papír impregnovaný
parafinovým olejem a vodné roztoky alkoholů nasycené
stacionární fází jako mobilní fáze (RP-PC).
TLC – mobilní fáze
O volbě mobilní fáze v TLC rozhoduje
použitá stacionární fáze
Pro dělení na adsorpčním principu a chemicky
vázaných fázích se volí rozpouštědla podle
eluční schopnosti – eluotropní řady (n-pentan
,……., voda)
Pro měniče iontů elektrolyty
Pro gely voda nebo organická rozpouštědla
PC a TLC - vyvíjení
Vzorek se nanese ve formě malých skvrn na
start pomocí mikropipetky, mikrostříkačky a
nechá se odpařit rozpouštědlo
Uspořádání vzestupné, sestupné (PC),
kruhové v komoře nasycené parami
rozpouštědel – rozpouštědlo vzlíná
kapilárními silami. V HPTCL deska v
hermetické „komoře“ s kontrolovaným
přetlakem
Vyvíjení
jednoduché (v jedné soustavě)
vícenásobné – aplikují se různé mobilní fáze, na čele
nové mobilní fáze dojde k zakoncentrování
dvojrozměrné – skvrna se vyvine v jednom směru,
deska se vysuší a otočí o 90° a vyvíjí se v jiné
soustavě
PC a TLC – vyhodnocování kvality
Pokud nejsou dělené látky barevné, je
nutno skvrny vizualizovat.
Postřik činidlem, nebo namočení do
roztoku který poskytuje barevnou reakci
(nespecifická – páry jódu, konc. kyselina
sírová, acidobazické indikátory pro kyseliny
a zásady, specifická pro funkční skupiny)
Pozorování v UV záření – fluorescence či
její zhášení na deskách s indikátorem (254
nebo 366nm)
Základní veličina, která charakterizuje
polohu separovaných zón je retardační
faktor RF definovaný jako poměr
vzdáleností, které urazil analyt di a čelo
mobilní fáze dm
RF = di/dm= ui/um = 1/(1+k)
u – příslušné rychlosti, k- retenční faktor
PC a TLC – vyhodnocování kvality
Hodnota RF se pohybuje od 0 (látka nemigruje) do 1 (látka
není zadržována a migruje s čelem rozpouštědla)
Hodnoty RF jsou špatně reprodukovatelné
Stacionární, mobilní fáze a páry nejsou v rovnováze
Kapilární síly záleží na průměru kanálků – průtok není konstantní
Látky se v PC a TLC vyhodnocují na základě RF hodnot a
jejich shodě se standardy
Využívají se také hodnoty RM definované
RM = log[(1/RF)-1 ]= log k
hodnoty RM souvisejí se strukturou, v homologických
řadách závisí lineárně na počtu strukturních jednotek
Pro kruhové vyvíjení platí RF,lineární =R2F,kruhový.
PC a TLC – vyhodnocování kvantity
Metody přímé
Měření plochy skvrny – logaritmus
plochy je úměrný koncentraci
Radiochemické metody –
radioaktivně značené látky
Denzitometrie – nejběžnější a
nejpřesnější – skenovací
fotodenzitometry převádějí intenzitu
skvrn na chromatogram s píky,
jejichž plocha je úměrná množství
analytu
Nepřímá metoda – skvrna se
vystřihne či vyškrábe a extrahuje a
stanoví se koncentrace
Kolonová LC
V klasickém provedení v kolonách 500 x 10mm, částice
0,05-1,0 mm + hydrostatický tlak – málo účinné, dlouhá
doba analýzy (hodiny) – dodnes pro preparativní a
jednoduchá dělení
HPLC se vyvinula z GC na počátku 70. let. Vysoké
účinnosti se dosahuje
Použitím malých částic (2-7μm) pravidelného tvaru a jednotné
velikosti
Průtok mobilní fáze musí být zajištěn vysokým tlakem (jednotky
– desítky MPa)
Lze zpracovávat malá množství (μl)
Potřeba citlivých detektorů
náročná instrumentace
Srovnání GC x HPLC
Rozdíly
Podstatně menší částice (dp) – GC
0,1-0,3 mm x HPLC 0,01 – 0,003
mm
Podstatně vyšší viskozita a hustota
mobilní fáze (Dm)
Aby bylo možno srovnávat
zavedeny redukované veličiny
h H / dp
u.d p / Dm
Kolony HPLC
Tradiční analytické náplňové kolony
délka 5-25 cm,
vnitřní průměr několik mm,
průtok mobilní fáze cca 1ml/min
objem vzorku 1-20 μl
částice náplně 5-10 μm, kulovitého tvaru
Během používání při vysokých tlacích se náplň
sesedá
Mikronáplňové
vnitřní průměr 1 mm a menší
částice 2-3 μm
Objem vzorku cca 1 μl
průtok mobilní fáze desítky μl/min
Lze ještě používat běžnou instrumentaci
Kolony HPLC
Kapilární náplňové
Vnitřní průměr 0,15 – 0,5 mm
Částice 2 μm a menší
Průtok mobilní fáze 1-15 μl/min
Kapilární
Vnitřní průměr 10 μm
Průtok mobilní fáze cca 1 ml/min
Vyžadují speciální instrumentaci
(čerpadla, nl-dávkovače,
detektory)
Čipová instrumentace (celý
kapalinový chromatograf na
čipu) – není dosud komerčně
dostupná
Monolitické kolony
Kompaktnější náplň než klasické náplňové kolony
Kolona je vyplněna polymerem organického či
anorganického původu o definované pórovitosti,
který se vytvoří přímo v koloně vhodnou polymerační
reakcí v roztoku
Monolitické kolony na bázi silikagelu mají vysokou
pórovitost, která dovoluje vysoké průtoky a velký
povrch pro interakce s analyty
Monolitické kolony mají větší životnost, velkou
mechanickou stabilitu, jsou odolnější ke změnám pH
a vykazují vysoké účinnosti při velkých průtocích
mobilní fáze
Separační principy v LC
Adsorpční chromatografie s
polárními sorbenty a
nepolárními mobilními fázemi je
historicky nejstarší – systém s
normálními fázemi
Analyt soutěží o aktivní místa na
povrchu adsorbentu s mobilní fází
Fyzikální adsorpce je
charakterizována slabšími
interakčními silami
Chemisorpce je nežádoucí
Silněji se sorbují polární látky
Sorpce je podporována nepolární
mobilní fází
LSC
Při velkém zředění solutu lze adsorpční děj popsat
lineární izotermou danou Henryho zákonem, při
vyšších koncentracích (preparativní HPLC)
sorpčními izotemami
Silikagel-polární sorbent (silanolové skupiny –SiOH) ,
siloxanové (Si-O-Si) jsou nežádoucí. Stabilní při pH 2-8
Alumina – stabilnější v alkalickém prostředí (pH 2-12),
vhodná pro látky bazického charakteru
Adsorbenty na bázi organických polymerů
Mobilní fáze nepolární rozpouštědla (hexan,
heptan,..) s malým množstvím (do 1%)
modifikátoru (voda, alkoholy, acetonitril,
tetrahydrofuran)
Vhodná pro separaci látek lišících se funkčními
skupinami a izomerů. Nevhodná pro dělení v
homologických řadách.
LC na chemicky vázaných fázích
Chemicky vázané fáze (hlavně nepolární-reverzní) v
součastné době nejpoužívanější
Umožňují aplikace pro analyty s širokým rozsahem polarity (80%
všech aplikací)
Široký sortiment fází
Levné mobilní fáze a rychlé ustavování rovnováhy
Reverzní chromatografie je jednodušší, rychlejší a
reprodukovatelnější
RP – umožňují přímé aplikace na biologické vzorky (vodné
roztoky)
Nevýhody
Složitý retenční mechanizmus
Chemicky vázané fáze na silikagelu jsou stabilní v omezeném
rozsahu pH (2,5-8)
Přítomnost nezreagovaných silanolových skupin vede k nežádoucí
adsorpci a je příčinou kompllikovaného mechanizmu
LC na chemicky vázaných fázích
Silikagel je nejběžnějším nosičem pro
chemicky vázané fáze – obsahuje
silanolové skupiny, ve kterých může být
aktivní vodík snadno nahrazen různými
funkčními skupinami –R. Většina fází je
siloxanového typu Si-O-Si-R
Reakcí s monochlororganosilany vznikají
fáze s monomolekulární vrstvou vázané
fáze, zatímco reakcí s di- a trichlorsilany
dochází k sesíťování a vzniku polymerní
vrstvy
v poslední době se používají i jiné
materiály jako oxid zirkoničitý a titaničitý,
které jsou stálé v širším rozsahu pH
Lze použít i polymerní nosiče, které jsou
stálé v širokém rozsahu pH, neobsahují
zbytkové aktivní skupiny, ale mohou
uplatňovat hydrofobní a vylučovací efekty
LC na chemicky vázaných fázích
RP – reversní fáze, NP – normální fáze
SEC – vylučovací chromatografie
LC na chemicky vázaných fázích
Mechanizmus separace na reversních chemicky vázaných
fázích je kombinací tří interakcí
Interakce solutu s mobilní fází (vodou) – rozhodující
Přídavkem organických rozpouštědel povrchové napětí vody klesá a
klesá i retence
Přídavkem solí povrchové napětí roste a zvyšuje se i retence
Interakce mobilní fáze se stacionární fází - při větším obsahu
organického rozpouštědla (nad 50%)jsou alkyly solvatovány a slut
reaguje s celým řetězcem
Rozdělování solutu mezi mobilní a stacionární fázi – retence roste s
množstvím vázaného uhlíku (10-60%) a délkou řetězce
Nejpoužívanější je oktadecylová fáze (RP C-18)
Lze separovat nepolární látky (voda + organická rozpouštědla)
Látky polarizovatelné a slabé kyseliny a báze (potlačit disociaci
volbou pH)
Látky iontového charakteru, přidáme li do mobilní fáze iontově
párové činidlo s opačným nábolem (laurylsulfát, tetraalkylamonné
soli,..) – tvorba asociátu – iontově párová chromatografie
Iontově výměnná chromatografie
Jako stacionární fáze se používají
Využívají s následující funkční skupiny
organické polymery
materiály na bázi silikagelu – jsou účinnější, rychleji se
ustavuje rovnováha, umožňují práci s gradientovou elucí
Karboxylová (-COOH) – slabý měnič kationtů
Sulfoskupiny (-SO3H) – silný měnič kationtů
Aminoskupina (-NH2) – slabý měnič aniontů
Tetraalkylamoniová (-N+(R)3) – silný měnič aniontů
Jako mobilní fáze se používají vodné tlumivé
roztoky, jejichž ionty jsou v dynamické rovnováze s
ionty měniče – čím větší koncentrace, tím rychlejší
eluce
Iontově výměnná chromatografie
Retenci lze ovlivňovat
Používá se pro
Koncentrací solí
Hodnotou pH
Teplotou
Přídavkem organického modifikátoru
látky iontové povahy – silné i slabé elektrolyty
Aminokyseliny – fáze ze silného katexu a C-18
Pro čištění peptidů a proteinů
některé neutrální látky lze převést na nabité ionty (komplexy diolů a
cukrů s kyselinou boritou)
Speciální případ je iontová chromatografie na silných
katexech či anexech s vodivostní detekcí. Aby byla detekce
citlivá, je nutno potlačit vodivost mobilní fáze (uhličitany
pro anionty a HCl pro kationty). Před detektor je zařazena
potlačovací ionexová kolona opačného charakteru, která
zamění disociovanou fázi za málo disociovanou- tedy málo
vodivou.
Vylučovací chromatografie (SEC, GPC)
Molekuly se dělí podle své velikosti na
základě vylučovacího nebo síťového efektu
Rozhodující úlohu hraje velikost a tvar solutu
a velikost a tvar pórů stacionární fáze (gelu)
Jiné symboly pro retenční charakteristiky
Vi – objem mobilní fáze uvnitř pórů stacionární
fáze
V0 – objem mobilní fáze mezi částicemi
Vt – celkový objem mobilní fáze v kolony
Vt = V0 + Vi
Molekuly větší než objem pórů se nedostanou
do stacionární fáze a eluují v objemu VR=V0
Malé molekuly, které mohou pronikat všemi
póry eluují v celkovém objemu mobilní fáze
VR=Vt.
Ostatní látky eluují v retenčním objemu VR (V
0<VR<Vt)
Vylučovací chromatografie (SEC, GPC)
Frakce objemu uvnitř pórů dosažitelná pro difúzi solutu se
nazývá distribuční konstanta K0
K0 = (VR-V0)/Vi VR = V0 + K0Vi
Velké molekuly VR = V0 a tedy K0 = 0
malé molekuly VR= Vt a K0 = 1
K0 (0 – 1)
Omezená separační kapacita (eluce mezi V0 a Vi).
Pro dosažení vyšší účinnosti separace nutno použít dlouhé
kolony
V případě ideálního chování v SEC (o retenci rozhoduje jen
velikost a tvar pórů sttacionární fáze a analytu), je retenční čas
(objem) přímo úměrný logaritmu molekulové hmotnosti Mr
tr = a – b log Mr
a,b - konstanty
Vylučovací chromatografie (SEC, GPC)
V případě ideálního chování v
SEC (o retenci rozhoduje jen
velikost a tvar pórů stacionární
fáze a analytu), je retenční čas
(objem) přímo úměrný logaritmu
molekulové hmotnosti Mr
tr = a – b log Mr
a,b – konstanty
Odchylky od ideálního chování
jsou způsobeny interakcemi solutu
se stacionární fází (iontová
výměna, adsorpce, solvofobní
interakce) Lze je někdy eliminovat
složením mobilní fáze- přídavek
organické fáze, solí
Vylučovací chromatografie (SEC, GPC)
Stacionární fáze
V klasické gelové chromatografii se používají hydrofilní zesíťované
agarosové a dextranové gely – bobtnají a jsou stlačitelné – nelze
používat v HPLC
Pro HPLC semirigidní a rigidní náplně na bázi styrendivinylbenzenového kopolymeru nebo methakrylátových polymerů
Pro biopolymery – hydrofilní polymery nebo anorganické stacionární
fáze (porézní sklo, silikagel) – nebezpečí adsorpce solutů a složek
mobilní fáze
Mobilní fáze by neměla vykazovat interakce s analyty ani
stacionární fází
Musí rozpouštět analyty (vyšší pracovní teplota)
Musí dobře smáčet povrch stacionární fáze, ale nesmí s ní interagovat
Nemá solvatovat soluty – zvýšení jejich zdánlivé molekulové hmotnosti
Kompatibilní s detektorem (pro UV nelze používat aromáty)
Vylučovací chromatografie (SEC, GPC)
SEC se využívá hlavně pro vysokomolekulární
látky v polymerní chemii a biochemii s
molekulovou hmotností nad 2 000.
Pro předseparaci komplexních vzorků (štěpných
produktů proteinů s tripsinem)
Oddělení nízkomolekulárních látek od
vysokomolekulárních (gelová filtrace)
Určení molekulové hmotnosti látek a její distribuce
Afinitní (biospecifická) chromatografie
Je založena na silných biospecifických
interakcích analytů s
komplementárními látkami (ligandy) –
interakce enzymů s inhibitory,
substráty,kofaktory či efektory,
komplexy protilátek s antigeny atd.
Stacionární fáze- nosič s kovalentně
navázaným ligandem (afinantem)
Na takovou fázi se ze vzorku zadrží
pouze látky s komplementární vazbou,
ostatní se eluují s mrtvým časem
Analyt se z vazby na ligand uvolní
změnou pH, koncentrace solí, změnou
teploty, přídavkem činidel
Volba separačního systému
Instrumentace v HPLC
Čerpadla
Pro kapilární kolony nl/min
Pro mikronáplňové μl/min
Čerpadla
Pro běžné náplňové kolem 1ml/min
Pro preparativní desítky ml/min
Gradient mobilní fáze
Odplyněné mobilní fáze přes filtr
Snížený tlak
Ultrazvuk
Probublávání heliem
Dávkování
Spektrofotometrické detektory
Fluorescenční detektor
Refraktometrický detektor
Refraktometrický detektor
Detektory pro HPLC
Detektor založený na rozptylu světla s odpařením
mobilní fáze (ELS – evaporative light scattering
detektor) . Použití je omezeno na netěkavé analyty
a těkavé mobilní fáze – universální detektor
Elektrochemické detektory (aminy, fenoly, …)
Měření vodivosti pro iontové látky
Měření elektrického proudu elektrochemického děje
(oxidace, redukce)
Pracovní elektrody
Ušlechtilý kov Au, Pt
Různé formy uhlíku pro oxidace
Rtuť a rtuťový film pro redukce
Spojení s AAS, IPC, AES, NMR, MS
Gradientová eluce
Během analýzy se mění složení mobilní fáze.
Používá se pro vzorky s velkými rozdíly v
retenčních faktorech (10 < k < 1)