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Méthodes
d'échantillonage
des insectes
Ethique et collecte d'insectes vivants
• Un échantillonnage d'insectes implique la capture et la mise en
collection d'un certain nombre de spécimens, pour une identification
correcte et pour des vérifications ultérieures.
• La collecte doit s'effectuer sur un nombre limité de spécimens, et
sans destruction des habitats.
• La collecte ne devrait se limiter qu'aux taxons qu'on est certain de
pouvoir identifier.
• Tous les échantillonnages risquent de capturer des espèces
protégées, l'entomologiste doit donc se munir des autorisations de
capture nécessaires.
• Méthodes actives
• L'entomologiste va vers l'insecte
• Très difficiles à reproduire de manière rigoureuse
• N'autorisent que des données qualitatives
• Méthodes passives
• L'insecte va vers l'entomologiste
• Pièges divers :
• Attractifs
• D'interception (données quantatives)
Chasse à vue
Les insectes sont échantillonnés à
vue, le long de transects sur des
éléments linéaires du paysage au
moyen d'un filet à papillons. Si le
temps est ensoleillé, c'est la méthode
efficace pour les Lépidoptères
Rhopalocères ou Zygaenidae, les
Odonates, les Coléoptères floricoles,
mais aussi pour beaucoup d'espèces
héliophiles vivant au niveau du sol,
comme les Orthoptères ou les
Cicindèles.
Lépidoptères, Hyménoptères, Diptères, Odonates,
Orthoptères, Coléoptères, Hémiptères,
Névroptères, (Trichoptères, Coléoptères)
Fauchage
Le filet fauchoir est utilisé dans la
végétation basse et permet de collecter
une faune extrêmement abondante
d'insectes (et d'arachnides). On
essaiera dans la mesure du possible de
faucher une espèce végétale à la fois.
Hyménoptères, Diptères,
Orthoptères, Coléoptères,
Hémiptères
Filet troubleau
C'est la version aquatique du précédent, indispensable pour la faune
de pleine eau, plus difficile à utiliser pour la faune de fond (larves).
Coléoptères, Hémiptères, et toutes larves aquatiques
Chasse à l'écoute
Les stridulations des mâles d'orthoptères et de cigales sont souvent plus
pertinentes que l'examen sous binoculaire pour une identification spécifique. Elles
permettent de repérer des espèces autrement très discrètes. Cet exercice nécessite
cependant un bon entraînement.
Orthoptères, cigales
Parapluie japonais (nappe montée)
Une toile carrée de couleur claire de 120 x
120 cm est tendue sur un cadre pliant en
bois. La nappe est maintenue d'une main
sous le feuillage des arbres et arbustes
pendant que l'on secoue brutalement les
végétaux avec l'autre main (battage). Les
insectes se laissent tomber sur la nappe où
ils sont facilement collectés. Cette méthode
capture tous les insectes présents sur les
branches des arbres et des arbustes :
Coléoptères
Elateridae,
Buprestidae,
Chrysomelidae et Curculionidae, mais aussi
Hémiptères et Homoptères, Névroptères,
Trichoptères etc…
Coléoptères, Hémiptères, Névroptères, Trichoptères (Orthoptères)
Berlese
Des échantillons de litière ou d'humus sont placés dans un entonnoir dont le
trou de sortie est fermé par un grillage de maille 0,5 cm. Une ampoule électrique
à incandescence est placée 20 cm au-dessus de l'entonnoir. La chaleur dégagée
par l'ampoule génère un gradient de dessiccation vertical dans la litière. La faune
mobile qui recherche l'humidité descend de plus en plus et finit par passer le
grillage pour tomber sous l'entonnoir où on aura bien entendu placé un flacon de
récolte avec liquide conservateur. Notez que certaines espèces en profitent pour
prendre une forme résistante à la sécheresse (enkystement).
Collemboles, Coléoptères et faune du sol en général (Myriapodes, Arachnides)
Visite des gîtes
Bien entendu, l'examen d'habitats très
particuliers est indispensable : bois morts,
notamment sous les écorces (à terre ou sur
pied), intérieur des champignons, sous les
grosses pierres, cavités dans les troncs,
bouses et crottins, nids et terriers, talus de
mousse au bord des ruisseaux etc. Attention,
certains
examens
sont
destructeurs
(arrachage des écorces, destruction des
souches …) ne vous transformez pas vousmêmes en vandales et remettez les pierres en
place. Des accessoires tels que tamis ou
enfumoirs facilitent ces examens.
Coléoptères, Diptères, fourmis et faune du sol (Myriapodes, Arachnides)
Piège lumineux
Les longueurs d'onde attractives pour les insectes sont en général proches de
l'ultraviolet. On pourra donc utiliser des lampes à décharge (dites lampes à
vapeur de mercure) d'une puissance variant entre 100 et 350 watts. Ces lampes
seront placées à proximité d'un drap blanc, posé sur le sol ou haubané sur des
mâts. L'énergie sera fournie par un petit groupe électrogène portable (parfois
l'alimentation EDF en zones rurales isolées et en l'absence d'éclairage urbain
parasite). Une alternative intéressante à ce système est fournie par des tubes
fluorescents de 30 cm (8 Watts) alimentés par des accus rechargeables,
système moins puissant mais facile à transporter et pouvant être équipé de
tubes UV. Dans tous les cas ne pas négliger la protection des yeux.
Lépidoptères, Trichoptères, Ephémèroptères, Plécoptères (Coléoptères)
Piège Barber
Les pièges sont constitués de gobelets en
polystyrène (20 cl) enterrés jusqu'au bord supérieur
de façon à créer un puits dans lequel les insectes
marcheurs vont choir. Une plaque (pierre, tuile ou
écorce), disposée un centimètre au-dessus du bord
supérieur du piège, protège de l'eau de pluie. Ces
pièges peuvent être rendus attractifs par l'addition
de 4 cl de vinaigre additionné de sel (conservateur).
Les pièges Barber ainsi appâtés sont très efficaces
pour échantillonner la faune des Carabidae et des
Silphidae. Ces pièges sont malheureusement
facilement localisés et détruits par les mammifères
ongulés, sauvages et domestiques.
Coléoptères
Piège à coprophages, à nécrophages
Il s'agit d'une variante du précédent, où on remplace le vinaigre
par un cadavre de vertébré ou des excréments frais, ceux des
primates omnivores étant très polyvalents…
Coléoptères, Diptères
Pièges à vin
Ces pièges sont fabriqués à partir d'une bouteille
d'eau minérale en PVC dont le goulot a été découpé et
serti à l'envers pour former un entonnoir. Le piège est
rempli avec 0,2 l de vin et suspendu le long d'un tronc
ou d'une branche maîtresse à une hauteur variant
entre 3 et 15 mètres suivant la topographie du site. Un
grillage sépare les insectes capturés du compartiment
vin au fond de la bouteille.
Ce type de piège est efficace pour capturer des
insectes floricoles comme les cétoines et certains
Cerambycidae. Il capture également de nombreuses
mouches (Syrphidae), des Noctuelles (Catocala spp.)
et des Hyménoptères Vespidae (guêpes et frelons),
ces derniers pouvant endommager gravement les
insectes déjà présents dans le piège. Ces pièges
aériens sont toutefois délicats à poser et à relever. Il
s'agit parfois d'un piège très destructeur.
Coléoptères, Lépidoptères, Hyménoptères, Diptères
Plaques abris
Il s'agit de plaques de bois aggloméré de 60 x 40 cm sur 22 mm d'épaisseur. Ces
plaques sont disposées sur le sol préalablement débarrassé des pierres ou
branches. Les plaques s'enfoncent légèrement dans le sol et s'imprègnent d'eau.
En période de sécheresse estivale, toute une faune du sol (Coléoptères
Carabidae, Arachnides, Myriapodes) s'abrite sous les plaques qui conservent
longtemps une forte humidité.
Les plaques abris ne sont pas destructrices et peuvent être laissées en place sur
de longues périodes. Elles sont cependant facilement repérables et parfois
sujettes à des actes de vandalisme.
Coléoptères et faune du sol
Piège à vitre
Ces pièges d'utilisation récente sont constitués
d'un croisillon en Plexiglas transparent placé audessus d'un entonnoir lui-même muni d'un
flacon collecteur (liquide conservateur).
L'ensemble est accroché le plus haut possible
en milieu boisé. Le rendement de ce piège non
destructeur est assez faible, mais il permet de
capturer des espèces (Coléoptères xylophages
notamment) qu'on ne trouve quasiment jamais
par d'autres méthodes, espèces qui ne
fréquentent que les strates les plus élevées de la
canopée. Attention, ce piège lourd et coûteux
est assez voyant et sujet au vandalisme.
Coléoptères (Hyménoptères, Diptères, Hémiptères)
Nasses à hydrocanthares
La nasse est de forme cylindrique, de 15 cm de diamètre
pour 40 cm de hauteur, réalisée en grillage PVC à maille de 5
mm. Aux deux extrémités du cylindre sont disposés deux
cônes inversés pour piéger les insectes entrants. La nasse
est munie de deux flotteurs (les coléoptères aquatiques
respirent en surface) et appâtée avec du cœur de bœuf.
Cette méthode facile à mettre en œuvre capture les gros
Dytiscidae et Hydrophilidae. Les insectes capturés vivants
peuvent facilement être relâchés après identification. La
grande voracité des dytiques limite cependant les
échantillonnages d'insectes aquatiques plus petits…
Coléoptères aquatiques, hydrocorises
Nasses à émergences
Une nasse en grillage ou en tulle de 20 ou 30 cm de hauteur est placée sur le sol
nettoyé, sur une surface la plus importante possible. N'oubliez pas de prévoir des
ouvertures (velcro) pour attraper les insectes piégés à l'intérieur de la nasse. Placée
en milieu boisé cette nasse permet de capturer des adultes nouvellement émergés
de nymphes vivant dans le sol. C'est de plus une méthode quantifiable (surface X
durée) particulièrement intéressante en écologie quantitative.
Diptères, Coléoptères
Substrats artificiels
Cette méthode permet parfois d'obtenir des
espèces introuvables par ailleurs. Le principe est
simple, on dispose dans l'environnement des
substrats artificiels, le temps que des insectes s'y
installent ou y pondent, puis on récupère le
substrat qu'on décortique au laboratoire, ou qu'on
laisse évoluer jusqu'à l'émergence des adultes.
C'est ainsi qu'on peut lier en bottes des
branchettes fraîchement coupées, accrochées en
forêt au printemps et récupérées en automne
(xylophages qu'on verra apparaître au printemps
suivant ou après 2 ans). Pour les Hyménoptères
solitaires, on peut fournir des substrats de nids en
accrochant des bottes de tubes creux (bambous)
de différents diamètres. Pour toute la faune
aquatique, on peut immerger des cages grillagées
emplies de ficelle et de cailloux sur lesquels divers
organismes vont lentement se fixer.
Coléoptères, Hyménoptères,
larves diverses