Transcript Contrôle de qualité des tests de sensibilité antimicrobienne Tests de sensibilité antimicrobienne fournissent des informations pour sélectionner l’antibiothérapie appropriée QC test de susceptibilité antimicrobienne - Module.

Contrôle de qualité des
tests de sensibilité
antimicrobienne
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Tests de sensibilité antimicrobienne
fournissent des informations
pour sélectionner
l’antibiothérapie appropriée
QC test de susceptibilité antimicrobienne - Module 8
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Méthodes d’interprétation
méthode des disques
fournit des résultats qualitatifs
interprétables : sensibles,
intermédiaires et résistants
 microdilution et diffusion en agar
fournissent un résultat quantitatif,
une concentration minimum
inhibitrice

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Méthodes
Les tests de sensibilité déterminent si la
bactérie peut être inhibée par un
antibiotique.
Tubes avec milieu de culture,
bactéries, et des quantité
croissante d’antibiotique
Concentration
Inhibitrice
Minimum
Dilution de milieu de
culture
Test de susceptibilité
Taille de la zone
Boîte d’agar avec
un tapis de pousse
bactérienne
La susceptibilité est basée sur la
concentration requise pour réduire la
pousse sous le niveau visible (voir CIM)
Note:
En mesurant la taille de la
zone, on peut calculer la CIM.
Plus la zone est petite, plus la
CIM est élevée
CIM
Zone d’inhibition
de la pousse
bactérienne
Disque
imprégné
d’antibiotique
Sensible
Une bactérie est dite sensible à
un antibiotique si la pousse est
inhibée par une concentration
qui est FACILEMENT et en toute
SECURITE obtenue dans la
circulation sanguine du patient.
Une réponse clinique positive
pour le patient est anticipée.
Résistante
L’opposé de sensible.
Taille de
la zone
Diffusion de disque
Test de susceptibilité
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Références
 Clinical and Laboratory Standards Institute
 Société française de microbiologie
 British Society for Antimicrobial Chemotherapy
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Exemple d’un extrait de référence :
sélection du médicament à tester
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quand des erreurs surviennent
dans le test de susceptibilité
 milieux
 antibiotiques
 inoculum
 incubation
 équipement
 interprétation
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Méthode des disques

Milieu
Disques
antibiotiques

Mueller Hinton
4 mm épaisseur
pH 7.2 to 7.4
stockage
température
-20oC mini

Inoculum
McFarland 0.5
(108 bacteria/mL)

Incubateur
température
35oC
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Souches de collection
 E. coli ATCC 25922
 S. aureus ATCC 25923
 P. aeruginosa ATCC 27853
Les souches de CQ doivent provenir
d‘organisations réputées
Utiliser des souches spécifiques pour tester
différentes combinaisons de médicaments
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Sélection d’une colonie à tester
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MacFarland 0.5
Ajuster la suspension bactérienne
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Utiliser des distributeurs de disques

Avantages
 pratiques,
rapides
 augmentent la
reproductibilité

Risques:
 contamination
 diminuent
les capacités
personnelles de
jugement
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Problèmes avec les disques
Disques correctement
alignés et espacés
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Disques correctement alignés
et espacés
Inoculum trop important
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Problèmes avec les disques
Disques correctement
alignés et espacés
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Zones non régulière car
le disque n’a pas été
appliqué correctement
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Mesurer
Règle
Pied à coulisse
Lecture avec une lumière suffisante et à l’arrière de
la boîte
La zone lue est spécifique à un médicament
Une loupe peut aider
Les millimètres comptent
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Etest – méthode par gradient de
concentration
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Les résultats peuvent être incorrects si :






l’organisme n’a pas été bien identifié
erreur de transcription
choix inapproprié d’antibiotiques
l’échantillon testé du patient n’était pas le bon
l’analyse demandée n’était pas la bonne
l’échantillon n’a pas été conservé
correctement
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