Transcript Les Angiospermes parasites: Biologie et méthodes de

VELU Céline
VILLENEUVE Hélène
VERCLYTTE Cécile
VIDAL Edouard
ZECH Justine
LES ANGIOSPERMES
PARASITES:
BIOLOGIE ET MÉTHODES DE
LUTTE.
Plan
I. Introduction
II. Cycles biologiques de quelques Angiospermes
parasites.
III. Etablissement de la relation trophique entre les
Angiospermes parasites et la plante-Hôte
IV. Conséquence du parasitisme
V. Méthodes de lutte
Introduction

Plantes parasites: définition
 Plantes
à fleur qui ont perdu leur autotrophie au cours
de l’évolution et qui sont devenues parasites de
nombreux genres de Gymnospermes et d’Angiospermes.
 Angiospermes Parasites:
~
4700 espèces
 En majorité des dicothilédones

Pourquoi les étudier ?
 Causent
d’importants dégâts
 Susceptibles d’en causer prochainement.
Principales familles parasites

-
-
Familles:
Scrophulariaceae
Orobanchaceae
Viscaceae
Loranthaceae
Ordre décroissant
d’importance des dégâts
provoqués.
Jusqu’au début des années 1980
Division des Angiospermes en 2 grands groupes:

Selon leur niveau d’hétérotrophie
 Plante
hémiparasite chlorophyllienne = partiellement
parasite.
 Plante holoparasite = parasite obligatoire.

Selon leur niveau de fixation sur l’hôte
 Plantes
parasites épiphytes  implantées sur les parties
aériennes
 Plantes
parasites épirhizes fixées sur le système racinaire
II. Cycle Biologique de quelques
Angiospermes parasites.
1) Scrophulariaceae.
1/5 des genres de cette famille
sont des parasites.
Le genre Striga: importants
dégâts dans les cultures
vivrières des pays d’Afrique
intertropicale et d’Asie du SudEST.
Striga:
–
Cycle

Dormance (immédiate après formation de la graine).
D’origine tégumentaire
 Durée: 4-6 mois
 Rôle : Empêche toute germination pendant la période sèche (=absence
d’hôte pendant cette période)

Premières Pluies
 Pré-conditionnement

Durée: 2-3 semaines
 Rôle: Altération des téguments


Téguments perméables= Imbibition des tissus sous-jacents.
Production de stimulant (Le Strigol ou la Sorgoléone)de
germination contenu dans les exsudats racinaires des racines hôte
Rem: ces graines ne seront capables de germer que si elles sont
situées près d’une racine hôte

–
Germination de la graine:
–
–
–
Emission d’une radicule
Allongement de la radicule en direction de la racine hôte =
Chimiotropisme
Arrivée à proximité de la racine hôte
–
–
Production d’enzymes par la radicule
Libération de Phénylpropanoïdes par les parois de l’hôte
–
Provoque la différenciation de papilles à l’extrémité de la radicule =
renforce l’adhérence du parasite à la surface de la racine hôte.
Pénétration des cellules méristématiques de l’extrémité de la
radicule dans les tissus de l’hôte = Formation du jeune suçoir.
Rem: Fixation sur la racine hôte:
–
–
Durée: <3 jours sinon dégénérescence
–
Traversée du suçoir:
–
–
–
Ecorce > Endoderme > Contact Xylème (arrêt)
Mise en place de connexions Xylémiennes
Mise en marche du suçoir:
–
–
Fonction de pompe
Fonction de site de transport des substances nutritives de
l’hôte vers le parasite.
Parallèlement à ça:
– Développement verticale d’une jeune tige translucide
– Sortie du sol : 35-45 jours après semis de l’hôte
Résumé

Période sous terraine:
–

Après Emergence:
–
–

Striga: Vie Holoparasite
Développement de feuilles chlorophylliennes
Moins dépendant de l’hôte: Hémiparasite
5-6 semaines Après:
–
–
Développement d’une hampe florale
Ex: S. hermonthica: Allogame
–
–
–
70-80 fleurs
70-80 capsules/fleur
500-700 graines/ capsule
Rem: S.asiatica et S.gesnerioides: Autogames
2) Orobanchaceae



Plus de 150 espèces
Principales plantes parasites des racines de
Dicotylédones
Région tempérées et subtropicales
5 espèces les plus dangereuses:
O.crenata
O.ramosa
O.cernua
O.aegyptiaca
O.minor
Hôtes Préférentiels:
Les Solanaceae
Les Fabaceae
Les Cucurbitaceae
Les Asteraceae

Symptômes:




Dessèchement des feuilles de l’hôte
Retard de croissance de l’hôte
Floraison et fructification défectueuses
Cycle biologique


Voisin de celui des Striga.
Différent sur 2 points
Caractéristiques des Orobanches:
–
Holoparasites
–
Partie émergée:
–
–
–
–
–
–
Charnue
Dépourvue de véritables feuilles
Dépourvue de pigments chlorophylliens
Ressemble à une asperge (stade jeune)
Rapide développement en hampe florale
Dès le développement du suçoir:
–
Partie externe à la racine hôte: Formation d’un tubercule volumineux
–
–
Riche en réserves amylacées
Importantes capacités organogènes
3) Cuscutaceae




1 seul genre: Cuscuta
Caractéristique des graines:
- petites (diam: 1-2 mm)
-Recouvertes d’un tégument
Microflore du sol > altération des téguments > levée de la
dormance.
Germination de la graine
 sans
intervention de l’hôte
 Large gamme de températures



La pseudo racine dégénère
La tige s’allonge 
établissement d’un contact avec
l’hôte (suçoir) vers les éléments
conducteurs de l’hôte.
Après quelques semaines la
cuscute fleurie et produit de
nombreuses graines
4) Loranthaceae sensu largo
 Ancienne
famille
 Regroupe les genres guis
 Sub-divisée en 2 familles: Les Viscacées et les Loranthacées
sensu stricto

Les Viscaceae
 Regroupe:
le gui blanc, le gui Américain, les guis nains.
Le gui blanc
-Fréquent en Europe: peupliers et pommiers
Cycle Biologique
-Baies sphériques renfermant 1 seule graine
-Dispersion des graines mûres:
Février-mars
 Par les oiseaux

Caractéristiques des graines

entourée d’un tissu visqueux et collant: la Viscine
Loranthaceae Sensu Stricto
Cycle biologique du genre Tapinanthus
III. Etablissement de la relation trophique entre les
Angiospermes parasites et la plante-Hôte



Interactions à l’interface entre plante-hôte et
angiosperme parasite.
Se fait à l’aide de suçoirs = appareil d’absorption
permettant la relation trophique
Les suçoirs s’enfoncent dans les tissus de la plantehôte
 Cunéiformes
 Suçoir
primaire
 Cordons corticaux
 Suçoirs secondaires
Cas du GUI
Cas d’une plante parasite épirhize
Coupe transversale
d’une tige
parasitée par
Cuscute
Suçoirs
III. Etablissement de la relation trophique entre
les Angiospermes parasites et la plante-Hôte

Deux modalités de pénétration :
 Mécanique
> 1ers stades de développement des
suçoirs
 Enzymatique > stades ultérieurs

Réactions de la plante-hôte:
 Epaississement
pariétal de différents types cellulaires
 Production de composés phénoliques
IV. Conséquences du parasitisme
1)
Le Détournement trophique


Détournement des substances nutritionnelle destinées à la plante
hôte.
Selon la position du parasite sur la branche:

Hypotrophie de la branche hôte


2)
Viscaceae, Loranthaceae
Dépérissement de la branche hôte
Les baisses de rendement
Parasites Epirhizes
-diminution du développement de l’hôte
-réduction de la floraison,de la fructification et de la production de
l’hôte
-ou dessèchement total de l’hôte avant floraison
3) L’hypertrophie localisée

Implantation des angiospermes parasites


Parasites Epiphytes

Formation de boursouflures: « Rose de Madère » ou « Rose de Palo »


Réaction morphogénétique: renflement des tissus de l’hôte
Hypertrophie: constituées de bois
Chez Striga:




Réduction de la croissance et du poids de l’hôte (> 30 fois leur poids)
Diminution de l’activité photosynthétique de l’hôte
Augmentation de la sensibilité de l’hôte à la photoinhibition
Modification de la balance hormonale



Réduction: Cytokinines, gibbérellines
Stimulation: inhibiteurs de croissance (ac.abscissique, farnesol)
Cause de la réduction de croissance de la partie aérienne au profit des racines
4)Le bois Madré
Parasites Epiphytes
Altérations technologiques du bois
-Nombreux trous: anciens emplacement des suçoirs secondaires avant leur dépérissement
Bois impropre au déroulage et au sciage.
V. Les méthodes de Lutte
Exemple de l’Orobanche

Lutte culturale
 Arrachage
manuel
 Rotation
 Plantes
pièges (ex: lin, coriande)
 Date de semis tardive
 Variétés résistantes (Tournesol, concombres, fèves)
 Fertilisation azotée et potassique élevée
 Irrigations et labours profonds
Lutte physique
 Solarisation
: couverture du sol avec un paillage en
plastique de polyéthylène pendant plusieurs jours avant le
semis
 Ex:
solarisation pendant 30 à 50 j > T° sol a 5cm = 56°C,
permet une diminution du PS de l’Orobanche de 90%
Lutte biologique
 Insectes:
Photomyza orobanchia kalt qui s’attaque
uniquement a Orobanche. Reduction de 50% d’Orobanche
dans un champ obtenu grâce à 500 à 1000 insectes/ha
 Champignons: Fusarium oxysporum f.sp. orthoceras permet
une amélioration de 80,5% du rendement (tabac) et une
diminution de 75% du parasitisme.
Lutte chimique
 Herbicides
: glyphosate (systématique total)
 Désinfectants du sol: Methylbromide, Dibromide d’éthyl,
Dazomet
Bibliographie
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Phytopathologie de Philippe Lepoivre
Larousse Agricole
INRA Maroc
www.futura-sciences.com