3. Mécanismes d`échanges d`informations génétiques chez les
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Transcript 3. Mécanismes d`échanges d`informations génétiques chez les
Mécanismes
d’échanges
d’informations
génétiques chez
les procaryotes
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Transfert horizontal de gènes
chez les procaryotes
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3.1 La transformation
Découverte : Fred Griffith (1928)
F. Griffith, 1928. The significance of
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pneumococcal types. J. Hyg. 27, 113-159
D’après G. Bourdonnais
Cegep de Ste Foy,Canada
Conclusions de Griffith
• Les bactéries S mortes ont transmis un
facteur transformant les bactéries R
en bactéries S
• Nature du facteur transformant??
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Expérience d’Avery (1940)
D’après G. Bourdonnais
Cegep de Ste Foy,Canada
Le facteur transformant est constitué d’ADN
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La transformation naturelle
- nécessite mise en place d’un état physiologique
particulier : état de compétence
-entrée ADN nu dans la cellule
- recombinaison homologue si et seulement si
homologie entre endogénote et exogénote
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Mécanismes moléculaires de
la transformation
a) mise en place de l’état de compétence
1. Production et excrétion du facteur de compétence
2. Absorbtion du facteur de compétence sur les sites
récepteurs
3. Activation des gènes spécifiques de la transformation
4. Synthèse d’une autolysine
5. L’autolysine démasque la nucléase et la protéine de
liaison à l’ADN
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Mécanismes moléculaires de
la transformation
b) Entrée et intégration
de l’ADN dans la cellule
compétente
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La compétence des bactéries (1)
Log UFC/mL
• Étude chez S. pneumoniae
• Durée limitée (10-15 min)
• Fin de phase exponentielle
État de compétence
temps
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La compétence des bactéries (2)
• Excrétion de facteur de compétence (fc)
• synthèse récepteurs à la surface de la cellule
• Fixation fc sur la cellule qui l’a synthétisé et
sur cellules voisines
• Nombre de récepteurs varie selon espèces
• % cellules compétentes varie selon espèces
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Prise en charge de l ’ADN par les
cellules compétentes
S. pneumoniae sensibles à pénicilline + ADN extrait
de bactéries résistantes à pénicilline + ADN thymus
de veau
-non spécifique
UFC/mL résistantes
ADN dénaturé
ADN natif
[ADN] thymus de veau
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-seul ADN db est
reconnu
Exogénote : addition ou
substitution?
Sélection A+
a-
A+
Taux de tf = L
Transf ADN de A+
A+ : caractère dominant
Sélection aa-
A+
Taux de tf =M
Transf ADN de a-
L=M
donc substitution
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Les m.o. procaryotes
naturellement compétents
• Une quarantaine d’espèces répertoriées
appartenant aux bactéries et aux archaées
• Gram + : S. pneumoniae, S. aureus, B. subtilis,
Lactibacillus lactis, …
• Gram- : N. gonorrhae, Vibrio sp, P. stutzeri,…
• Archae : Methanobacterium
thermoautotrophicum, Methanococcus voltae
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Rôles de la transformation naturelle? (1)
• Réparation ADN
UV
B
A
TT
B lysée
- ADN de cellule B retrouvé dans ADN
de cellule A : réparation
- Rec A activée
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Rôles de la transformation naturelle :
formation des gènes mosaïques
• Comparaison de l’ADN de différentes
souches de S. pneumoniae
sauvage
Mutant 1
Mutant 2
Sp1
Sp2
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Sp3
Transformations dans
l’environnement
-évolution des micro-organismes en conditions
environnementales
- devenir des mo génétiquement modifiés
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La transformation artificielle
• Traitement CaCl2 et choc thermique
• Choc électrique : électroporation
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Échanges d’informations
génétiques entre cellules
1.Transformation
2. Conjugaison
3. Transduction
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Expérience de Lederberg et Tatum (1946)
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Expérience de Davies (1950)
Souche A Souche B
- pas de recombinants isolés si les
souches A et B sont séparées par
un filtre imperméable aux bactéries
Conjugaison nécessite
contact entre cellules
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Sens du transfert ?
Expérience de Hayes (1952)
• Souche A SmR + souche B SmS
– MM : qq colonies
– MM + Sm : 0 colonies
• Souche A SmS + souche B SmR
– MM : qq colonies
– MM +Sm : qq colonies
• Transfert à sens unique
• Transfert de A vers B
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Facteur sexuel F = plasmide F
Opéron tra
Synthèse des pilis : traA, traL, traE, traK, traB,
trav, traC, traW, traU, traF, traQ, traH, traG,
exclusion de surface : traS, traT,
Insertion dans
le chromosome
Transfert de l’ADN (gènes mob): traM, traY,
traD, traI, traZ
Régulation : finP, finO, traJ
replication
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Le plasmide R100
Opéron tra
très proche
de celui du
plasmide F
Résistances aux
antibiotiques et métaux lourds
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Les plasmides conjugatifs
•
•
•
•
Autotransférables
ADN circulaires autoreplicatifs
Très répandus dans les bactéries et archaées
Une bactérie peut en héberger entre 0 et une
dizaine
• Peuvent héberger des fonctions diverses :
résistances antibiotiques ou composés
toxiques, opérons métaboliques, interactions
avec autres bactéries (symbiose, virulence),
etc..
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Mécanisme de conjugaison
Transfert de l’ADN :
gènes mob
Formation couple de
conjugaison : gènes tra
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Transfert de l’ADN
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Les souches Hfr
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Pont cytoplasmique
Les différents
« destins » du plasmide F
D’autres plasmides
conjugatifs se
comportent de la
même manière!
D’après D. Bryant, Univ. MacGill, Canada
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La formation des souches
« haute fréquence de
recombinaison » (Hfr)
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Initiation de la
mobilisation de
marqueurs
chromosomiques
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Mobilisation de marqueurs chromosomiques
C
D
B
A
R
c
C
D
B
b A
a
B
A
R
c
B
A
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R
Différentes souches Hfr
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Carte chromosomique E.coli K12
établie grâce à l’étude des dérivés Hfr
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Pourquoi le marqueur SmR n’est-il pas passé dans
l’expérience de Hayes?
SmR
C
B
D
A
R
c
SmR
D
C
B
b A
a
B
A
R
c
B
A
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R
Conjugaison-mobilisation
Transfert de replicons non-conjugatifs à
l’aide d’un plasmide conjugatif « helper »
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Mobilisation
par donation (A)
et conduction (B)
GEF L2S4 2008-2009 D’après la thèse de Barbara Albiger, ULP, 1999
Exemples de mobilisation
• Plasmides non-conjugatifs : par
donation et conduction
• Gènes chromosomiques via Hfr : par
conduction
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Échanges d’informations
génétiques entre cellules
1.Transformation
2. Conjugaison
3. Transduction
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Découverte : Zinder et Lederberg (1951)
Souche A : S. Typhimurium LT-22 (P22) : trySouche B : S. Typhimurium LT-2 : hisSouche A
Souche B
Isolement de bactéries prototrophes try+ à partir de la
souche A
Filtre : perméable à ADN, virus mais pas bactéries
Agent filtrable :
- insensible à DNAse,
- possède caractéristiques physiques de P22
- inactivé par sérum anti-P22
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Transduction généralisée
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Transduction généralisée
• Existe chez nombreuses bactéries G+ et G-,
• Insertion de l ’ADN exogène : recombinaison
homologue
• Transduction effective si [phages] <<<[ bactéries]
• Efficacité de transduction inversément
proportionnelle à efficacité de la nucléase phagique
• Proportion transductants :
– 0,3%/cell. réceptrices pour P1
– 1-5%/cell. réceptrices pour P22
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Transduction spécialisée
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Transduction
dgal, pbio
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Transduction spécialisée
dgal : perte de gènes impliqués dans la synthèse de
nouvelles particules phagiques (défectif gal),
toujours lysogènes, mais uniquement infectieux en
présence particules phagiques « helper »
pbio : perte gènes int et xis, toujours infectieux
(plages bio), mais uniquement lysogène en
présence de particules phagiques « helper »
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